Стероиды для бройлеров: Гормоны в птицеводстве

«Росконтроль» проверил тушки цыплят-бройлеров и занес одну из фирм в «черный список»

В лабораторию отправились бройлеры фирм «Мираторг», «Ясные зори», «Моссельпром», «Первая свежесть», «Петелинка», «Первым делом» и «Приосколье».

Часть образцов подвела проверка на органолептические показатели. Например, при вскрытии пакета с цыпленком «Первым делом» вылилась красноватая жидкость. Это признак того, что тушка, возможно, была плохо обескровлена. Небольшие кровоподтеки обнаружены на образцах «Моссельпрома», «Первой свежести», «Петелинки» и «Приосколья».

В тушке «Моссельпрома» эксперты определили посторонний запах, он же сохранился и в получившемся бульоне. Бройлер «Петелинки» тоже имел посторонний запах, но в готовом бульоне он уже не ощущался.

Признаков инъекций из жира и мяса низших сортов, которую могут вводить в мясо для увеличения его массы, в образцах не обнаружили.

— Бытует представление о том, что курам вводят гормоны роста или стероидные гормоны, чтобы мяса было больше. В качестве доказательства часто приводят размеры куриных тушек, которые продаются в магазинах. Чтобы установить, так ли это, мы включили соответствующую проверку в наше исследование. И во всех проверенных образцах гормоны, присутствие которых в продукции из мяса птицы не допускается, также не были обнаружены. На самом деле анатомические особенности наподобие большого размера характерны именно для бройлеров и обусловлены тем, что при выведении этих пород птицы проводился отбор животных с максимальной продуктивностью по мясу, — рассказала главный эксперт «Росконтроля» Ирина Аркатова.

Бытует представление о том, что курам вводят гормоны роста или стероидные гормоны, чтобы мяса было больше

Тушки брендов «Петелинка» и «Первым делом» были добавлены в список товаров с замечаниями, а цыпленок «Моссельпрома» попал в «черный список» «Росконтроля». Помимо постороннего запаха, эксперты обнаружили в мясе признаки неправильного или длительного хранения.

Бройлеры РОСС 308 (ROSS 308) – нормативные показатели

Бройлеры РОСС 308 (ROSS 308) обладают универсальными качествами и отвечают широкому спектру требований, которые предъявляются к конечному продукту. Описание нормативных показателей по выращиванию цыплят кросса ROSS 308 поможет Вам оценить, на сколько выгодно будет купить и выращивать цыплят этой породы.

Продуктивные показатели бройлеров РОСС 308 (ROSS 308)

На достижение нормативных показателей бройлеров могут влиять следующие факторы:

• доступность кормового сырья может ограничивать уровень потребления питательных веществ;
• экстремальные климатические условия могут снижать продуктивность;
• экономические предпосылки могут ограничивать выбор производственной системы.

Таким образом, средние показатели продуктивности могут быть ниже, чем нормативные.

В приведенных таблицах все нормативные значения кросса ROSS 308 округлены, что может вызывать небольшие неточности при использовании нормативной продуктивности для расчета других производственных показателей.

Выход мяса может варьироваться между перерабатывающими цехами, в зависимости от используемого оборудования (технология охлаждения тушки, автоматическая или ручная обвалка) а также точности порционной разделки.

Ключевые технологические аспекты выращивания бройлеров РОСС 308 (ROSS 308)

ROSS 308 — это сильный, быстрорастущий бройлер, имеющий эффективную кормоконверсию и высокие мясные показатели. Этот кросс выведен для удовлетворения спроса потребителей, которым требуется постоянство продуктивных результатов, а также универсальность продукции, способная удовлетворить рынок с широким ассортиментом мясной продукции. Экономическая эффективность производства куриного мяса зависит от высокой продуктивности производства бройлеров РОСС 308, а для достижения этого важно соблюдение следующих аспектов технологии:

• Оптимизировать качество цыплят, применяя эффективные технологические методы условий инкубации, хранения и транспортировки.

• Создать условия раннего выращивания, обеспечивающие легкий доступ цыплят к воде и корму, начиная с момента посадки, а также естественный переход от использования дополнительных поилок и кормушек к применению автоматизированной системы кормления и поения в возрасте 4-5 дней. Применять легко усвояемый стартовый корм, имеющий оптимальный баланс питательных веществ.

• Содержать цыплят в оптимальном температурном режиме, наблюдая за их поведением, при этом не допуская значительного снижения относительной влажности воздуха (менее 50%). Создать программу минимальной вентиляции, начиная со дня посадки цыплят.

• Наблюдать за наполнением зоба, активностью потребления корма и воды, а также за живой массой 7 дней — для контроля эффективности условий раннего содержания.

• Содержать кур бройлеров в режиме температурного комфорта в течение всего периода выращивания. Быстро растущие бройлеры выделяют значительное количество метаболического тепла, особенно во второй половине производственного цикла. Поддержание температуры окружающей среды ниже 21°С, начиная с возраста 21 день, будет способствовать оптимизации роста бройлеров.

• Поддерживать высокий режим биозащиты и гигиены для снижения риска заболеваний.

Табл. 1. Продуктивные показатели смешанного стада бройлеров РОСС 308 (ROSS 308)

[spoiler]

День	Живая масса (г)	Суточный привес (г)	Сред. сут. привес/ нед. (г)	Суточное потребление корма (г)	Потребл. с нараст. итогом (г)	Конверсия корма
0	42
1	56	14		13	13	0,237
2	72	15		17	30	0,419
3	89	18		20	50	0,561
4	109	20		23	73	0,673
5	132	23		27	100	0,762
6	157	25		31	131	0,834
7	185	28	20,48	35	166	0,893
8	217	31		39	204	0,942
9	251	35		43	247	0,984
10	289	38		48	295	1,021
11	330	41		53	348	1,053
12	375	44		58	406	1,083
13	422	48		63	469	1,110
14	473	51	41,12	69	538	1,136
15	527	54		74	612	1,160
16	585	57		80	692	1,183
17	645	60		86	778	1,206
18	709	63		92	870	1,228
19	775	66		98	968	1,249
20	844	69		104	1072	1,270
21	916	72	63,19	110	1182	1,291
22	990	74		116	1298	1,312
23	1066	77		122	1421	1,332
24	1145	79		128	1549	1,353
25	1226	81		134	1684	1,373
26	1309	83		140	1824	1,394
27	1393	85		146	1970	1,414
28	1479	86	80,55	152	2122	1,434
29	1567	88		157	2279	1455
30	1656	89		163	2442	1,475
31	1746	90		168	2610	1,495
32	1836	91		173	2783	1,515
33	1928	92		178	2961	1,536
34	2020	92		183	3144	1,556
35	2113	93	90,56	187	3331	1,576
36	2207	93		192	3523	1,597
37	2300	94		196	3719	1,617
38	2394	94		200	3919	1,637
39	2488	94		204	4123	1,658
40	2581	94		208	4331	1,678
41	2675	94		211	4543	1,698
42	2768	93	93,57	215	4757	1,719
43	2861	93		218	4975	1,739
44	2954	93		221	5196	1,759
45	3046	92		224	5420	1,780
46	3137	91		227	5647	1,800
47	3228	91		229	5876	1,820
48	3318	90		231	6107	1,841
49	3407	89	91,22	233	6341	1,861
50	3495	88		235	6576	1,882
51	3582	87		237	6813	1,902
52	3669	86		239	7052	1,922
53	3754	85		240	7293	1,943
54	3838	84		241	7534	1,963
55	3920	83		243	7776	1,984
56	4002	81	84,96	243	8020	2,004
57	4082	80		244	8264	2,025
58	4160	79		244	8508	2,045
59	4238	77		245	8753	2,066
60	4313	76		245	8998	2,086
61	4388	74		245	9242	2,107
62	4460	73		244	9487	2,127
63	4531	71	75,84	244	9730	2,147
64	4600	69		243	9973	2,168
65	4668	67		242	10216	2,189
66	4733	66		241	10456	2,209
67	4797	64		240	10696	2,230
68	4859	62		238	10934	2,250
69	4919	60		236	11170	2,271
70	4978	58	63,8	234	11405	2,291

ПРИМЕЧАНИЯ

1. Живая масса в хозяйстве (т. е. наличие корма в кишечнике).
2. Потребление корма на живую птицу.
3. Кормоконверсия включает живую массу при посадке и не учитывает отход.

Все нормативные значения в таблице округлены, что может вызывать небольшие неточности при использовании нормативной продуктивности для расчета других производственных показателей.

[/spoiler]

Табл. 2. Продуктивные показатели петухов бройлеров РОСС 308 (ROSS 308)

[spoiler]

День	Живая масса(г)	Суточный привес(г)	Сред.сут. привес/нед. (г)	Суточное потребление корма (г)	Потребл. с нараст. итогом (г)	Конверсия корма
0	42
1	56	14		12	12	0,217
2	71	15		16	28	0,390
3	89	18		19	47	0,529
4	109	20		23	70	0,641
5	132	23		27	96	0,732
6	157	26		31	127	0,808
7	186	29	20,54	35	162	0,871
8	218	32		39	201	0,924
9	253	35		44	245	0,969
10	291	39		49	294	1,009
11	333	42		54	348	1,044
12	379	46		60	408	1,076
13	428	49		65	473	1,105
14	481	53	42,11	71	544	1,132
15	537	56		77	621	1,157
16	596	60		83	704	1,181
17	660	63		90	794	1,203
18	726	67		96	890	1,226
19	796	70		103	993	1,247
20	869	73		109	1102	1,268
21	945	76	66,42	116	1219	1,289
22	1025	79		123	1342	1,309
23	1107	82		130	1471	1,329
24	1191	85		136	1608	1,350
25	1278	87		143	1751	1,369
26	1368	89		150	1900	1,389
27	1459	92		156	2056	1,409
28	1553	94	86,81	163	2219	1,429
29	1649	95		169	2388	1,448
30	1746	97		175	2563	1,468
31	1844	99		181	2744	1,488
32	1944	100		187	2930	1,507
33	2045	101		192	3122	1,527
34	2147	102		198	3320	1,546
35	2250	103	99,56	203	3523	1,566
36	2353	103		208	3731	1,585
37	2457	104		213	3944	1,605
38	2562	104		217	4161	1,624
39	2666	104		222	4383	1,644
40	2771	105		226	4609	1,664
41	2875	104		230	4839	1,683
42	2979	104	104,21	234	5073	1,703
43	3083	104		237	5310	1,722
44	3187	104		241	5551	1,742
45	3290	103		244	5795	1,761
46	3393	102		247	6041	1,781
47	3494	102		250	6291	1,800
48	3595	101		252	6543	1,820
49	3695	100	102,28	254	6797	1,839
50	3795	99		257	7054	1,859
51	3893	98		259	7313	1,879
52	3990	97		260	7573	1,898
53	4086	96		262	7835	1,918
54	4180	95		263	8098	1,937
55	4274	93		265	8363	1,957
56	4366	92	95,79	266	8629	1,976
57	4457	91		267	8895	1,996
58	4546	89		267	9163	2,016
59	4634	88		268	9431	2,035
60	4721	87		268	9699	2,055
61	4806	85		269	9968	2,074
62	4889	83		269	10237	2,094
63	4971	82	86,43	269	10506	2,113
64	5051	80		269	10775	2,133
65	5130	79		268	11043	2,153
66	5207	77		268	11311	2,172
67	5282	75		267	11578	2,192
68	5356	74		267	11845	2,211
69	5428	72		266	12110	2,231
70	5498	70	75,35	265	12375	2,251

[/spoiler]

Табл. 3. Продуктивные показатели кур бройлеров РОСС 308 (ROSS 308)

[spoiler]

[/spoiler]

Выход тушки бройлеров РОСС 308 (ROSS 308)

Приведенные диаграммы показывают, что выход основных порционных частей зависит от увеличения живой массы каждого пола. Здесь приводится два типа переработки: потрошеная тушка, пропорционально разделанная на мясо грудки, бедра и голени для демонстрации результатов разделки, или тушка, разделанная на мясо грудки и мясо ноги для демонстрации результатов обвалки.

ROSS 308 петух – разделка

ROSS 308 курица – разделка

ROSS 308 петух – обвалка

ROSS 308 курица – обвалка

Терминология:

Потрошенная тушка % — потрошеная тушка (без шеи, абдоминального жира и внутренних органов) в процентном соотношении к живой массе.

Грудка % — грудная мышца (без кожи и костей) в процентном соотношении к живой массе.

Бедро/Голень % — бедро/голень (с кожей и костями) в процентном соотношении к живой массе.

Мясо ноги % — сумма обваленного бедра (без кости) и обваленной голени (без кожи) в процентном соотношении к живой массе.

Примечание: Данные значения представляют собой значения сухого выхода, т.е. не включают остаточную влагу, получаемую в результате процесса охлаждения или переработки. Выход частей тушки бройлера будет варьироваться между цехами переработки в зависимости от типа применяемого оборудования, а также точности порционной разделки.

В Украине купить цыплят бройлеров породы РОСС 308 можно в Пологовской инкубаторной станции. Информацию о такой возможности Вы можете получить из графика реализации, а также позвонив по телефонам или отправив электронное письмо на адреса, указанные в разделе «Контакты».

Влияние стероидного стимулятора роста на морфологические и биохимические адаптации печени бройлеров

Vet World. 2020 ноя; 13 (11): 2330–2337.

Насрин Султана

¹ Кафедра анатомии и гистологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

Марсия Афросе

¹ desh Кафедра анатомии и гистологии, факультет ветеринарии Бангладеш , Мименсингх, Бангладеш

Кази Рафик

² Кафедра фармакологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

¹ Кафедра анатомии и гистологии, Факультет ветеринарных наук Бангладеш, Бангладешский сельскохозяйственный университет , Бангладеш

² Кафедра фармакологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

Поступила в редакцию 14 июня 2020 г . ; Принята в печать 29 сентября 2020 г.

Abstract

Цель:

Исследование было проведено для наблюдения за влиянием дексаметазона (DEX) на общее исследование и гистоморфометрию печени, а также на изменения биохимических параметров бройлеров.

Материалы и методы:

Девяностодневных цыплят были собраны и распределены в одну из трех групп: контрольная, группа A и группа B. Контрольная группа, группа A и группа B кормились в течение 28 дней домашним животным. рацион, коммерческий рацион для бройлеров и домашний рацион с DEX (7 мг / кг корма), соответственно.Образцы печени собирали у отдельных птиц после умерщвления на 7, 14, 21 и 28 дни эксперимента. Изучены морфометрические характеристики (длина, вес, цвет, текстура) печени. Гистоморфологические изменения печени оценивали с помощью стандартного окрашивания гематоксилином и эозином. Для измерения биохимических показателей образцы крови отбирали на 7, 14, 21 и 28 дни эксперимента. Функциональный тест печени проводился спектрофотометрически путем анализа биохимических маркеров сыворотки крови, то есть аланинаминотрансферазы (АЛТ), аспартатаминотрансферазы и щелочной фосфатазы (ЩФ).Для обнаружения печеночных стероидов выполняли тонкослойную хроматографию (ТСХ).

Результаты:

Геморрагия и гиперемия печени были обнаружены у бройлеров группы B. Не было обнаружено значительных изменений в весе и длине печени; У птиц группы B наблюдалось только численное уменьшение веса и длины. Ширина печени увеличилась в группе B на 21 день. Гистологическое исследование печени показало накопление липидных капель, скопление синусоидов и центральных вен у бройлеров группы B.Биохимические анализы показали повышенные уровни ALT в группе B по сравнению с группой A на 14 день эксперимента. Оценка ТСХ показала положительный результат в группе В на 28 день эксперимента.

Заключение:

Результаты настоящего исследования показывают, что DEX может изменять морфологию печени и концентрацию АЛТ в циркуляции бройлеров.

Ключевые слова: бройлер, дексаметазон, стимулятор роста, печень

Введение

В настоящее время птицеводство становится ведущей отраслью сельского хозяйства Бангладеш.В течение последних двух десятилетий этот сектор рос примерно на 35% в год [1]. Эта отрасль обладает огромным потенциалом для ускорения экономического роста страны, а также обеспечения продовольственной безопасности. Совместное исследование IFPRI / FAO / ILRI показало, что мировое производство и потребление мяса будет продолжать расти с 233 миллионов метрических тонн (МТ) в 2000 году до 300 миллионов МТ в 2020 году, при этом производство мяса птицы увеличится с 9 МТ в 1960 году. до 68 тонн в 2000 г. из-за увеличения национального спроса [2].Это привело к открытию и широкому использованию ряда «стимуляторов роста (GP)». ГП добавляются в рацион с целью повышения продуктивности животных за счет увеличения скорости роста, повышения эффективности преобразования корма, увеличения выживаемости и снижения смертности домашней птицы [3]. Кроме того, терапевты становятся все более популярными в качестве кормовых добавок из-за их благоприятного воздействия на здоровье кишечника и иммунитет [4,5].

Глюкокортикоиды (ГК) — стероидные гормоны, содержащие как природные, так и синтетические производные [6].Из коры надпочечников разных видов выделено более 50 стероидов [7]. Только несколько стероидов в первую очередь ответственны за влияние коры надпочечников на углеводный, белковый и жировой обмен. Таким образом, эффекты, опосредованные ГК, включают, например, усиление глюконеогенеза, снижение периферической утилизации глюкозы, усиление антагонизма к инсулину, усиление катаболизма белков, снижение накопления жира и стимулированные противовоспалительные эффекты [8], включая уменьшение циркулирующих лимфоцитов, эозинофилов и фиксированных лимфоцитарные ткани и уменьшение местных воспалительных процессов [9]. Дексаметазон (DEX) представляет собой синтетическое производное ГК, основное терапевтическое использование которого связано с его противовоспалительными и иммунодепрессивными свойствами [8]. Большая часть DEX, используемого в ветеринарии, предназначена для борьбы с воспалениями или аллергией. Таким образом, злоупотребление кортикостероидом в этой категории не является редкостью. В мясном скотоводстве DEX обычно используется для повышения показателей роста крупного рогатого скота [6,10,11]. Незаконное употребление стероидов GP в высоких дозах, то есть 7 мг / кг [12], и их остатки в пищевых продуктах могут негативно повлиять на умственное и физическое развитие детей и фертильность женщин, вызвать рак и повредить жизненно важные органы, такие как мозг, печень и т. Д. почки и сердце [13].Из-за этих проблем со здоровьем некоторые стероидные терапевты были запрещены к использованию у животных, производящих пищу, Европейским Союзом (ЕС) [14,15]. Чтобы защитить здоровье потребителей от любых потенциальных рисков, ЕС одобрил использование DEX в животноводстве только в терапевтических целях и установил соответствующие максимальные пределы остатков в тканях и молоке, предназначенном для потребления человеком (Совет Европейских сообществ 1990 г. , Постановление Совета 90/2377 / EEC) [14].

Печень, самая большая железа в организме, используется для фильтрации вредных токсинов из крови и для синтеза витаминов и минералов.Это также важно для баланса уровней белков, холестерина и сахаров. Кроме того, печень используется для производства желчи, помогающей переваривать пищу. В общем, ГК могут вызывать подавление иммунитета, что приводит к неспецифическому росту бактерий, вирусов и паразитов в организме, а токсины этих микробов также могут вызывать повреждение печени. ГК являются ферментативными и термостойкими и обычно откладываются в печени [16], что приводит к гепатотоксичности. Из-за гепатотоксичности некоторые специфические для печени ферменты (аланинаминотрансфераза [ALT], аспартатаминотрансфераза [AST] и щелочная фосфатаза [ALP]) могут выделяться в кровь.В общем, повышенные концентрации циркулирующих ферментов являются показателями острого поражения органа, а не снижения функции органа. Повышение концентрации АСТ и АЛТ в плазме является наиболее специфическим индикатором повреждения клеток печени [17].

Настоящее исследование направлено на изучение гистоморфологии печени и изменений биохимических параметров крови бройлеров в ответ на стероид GP DEX.

Материалы и методы

Этическое разрешение

Все процедуры обращения с животными соответствовали правилам ухода и использования, установленным Комитетом по благополучию животных и этике экспериментов, Сельскохозяйственный комитет Бангладеш, Мименсингх (AWEEC / BAU / 2019 [23]) .

Птицы и менеджмент

Настоящий эксперимент проводился в январе 2019 года на кафедре анатомии и гистологии Бангладешского сельскохозяйственного университета, Мименсингх-2202. Для эксперимента рассматривали девяностодневных цыплят (DOC) линии «Cobb 500». Их выращивали в помещении с контролируемой средой в течение 28 дней в экспериментальном сарае. Бройлеров кормили стандартным стартовым рационом и рационом откорма бройлеров на протяжении всего экспериментального периода.

Схема эксперимента

Всего 90 бройлеров DOC «Cobb 500» случайным образом были разделены на три равные группы (каждая n = 30): контрольная группа, группа A и группа B. Птицы контрольной группы, группы A и группы B выращивались на домашнем рационе бройлеров, коммерческом рационе бройлеров и домашнем рационе бройлеров с высокой дозой DEX, соответственно. Образцы крови из крыловой вены и образцы печени собирали на 7, 14, 21 и 28 дни экспериментального периода. Образцы печени были взяты в асептических условиях у каждого бройлера для общего наблюдения, гистологического исследования и тонкослойной хроматографии (ТСХ).

Опытный рацион

Птица контрольной группы выращивалась на домашнем рационе бройлеров.Бройлеры группы А были выращены на бройлерном рационе коммерческого типа. Бройлеры группы B выращивались на домашнем рационе бройлеров, включающем высокую дозу добавки DEX (7,0 мг / кг массы тела) в корме. Коммерческий рацион был привезен компанией Nourish Poultry and Hatchery Ltd., Бангладеш. Домашний рацион был составлен в соответствии с ингредиентами коммерческого рациона (). Каждый ингредиент рациона готовился отдельно, а затем смешивался с домашним рационом.

Таблица-1

Кормовые ингредиенты и химический состав рациона.

3

Состав	Предстартерный бройлер	Стартовый бройлер	Бройлер откормочный
Кукуруза	43,00 кг	40,32 кг	43,64 кг
90,00 90,00 Пшеница 10,00 кг	10,00 кг
Рисовая полироль	4,00 кг	8.00 кг	10,00 кг
Соя	26,00 кг	29,00 кг	22,50 кг
Мясно-костная мука	9,00 кг			897yster 900	1,00 кг	1,00 кг	1,00 кг
Соль	300 г	300 кг	250 г
Метионин	200 г	18088	900	900	30 г	30 г	30 г
Витаминный премикс (бройлер)	250 г	250 г	250 г
Кормовой фермент	—	—
Соевое масло	6. 5 кг	3,5 кг	4,0 кг
DCP	2,50 кг	2,50 кг	—
Хлорид холина	100 г	100 г		100,00 кг	100,00 кг	100,00 кг

Общее исследование

При общем исследовании учитывались такие параметры, как цвет, длина и вес. Цвет печени сравнивали в контрольной и опытной группах путем визуального наблюдения.Длина и ширина печени у разных групп измеряли по градуированной шкале.

Гистология печени

Образцы печени были быстро удалены и сохранены в 10% нейтральном забуференном формалине. После 24-часового периода фиксации ткани обезвоживали, а затем заливали парафином. Парафиновые блоки разрезали на срезы толщиной 6 мкм с помощью скользящего микротома (MIC 509, Euromex, Япония). Образцы помещали на предметные стекла, сушили в течение ночи, а затем окрашивали гематоксилином и эозином для определения морфологических изменений.

Биохимические исследования

Пять миллилитров крови были собраны без антикоагулянта в стерильные стеклянные пробирки. Пробирки с кровью помещали в наклонное положение при комнатной температуре для свертывания. Затем пробирки помещали в холодильник на ночь при 4 ° C. Кровь центрифугировали при 1000 об / мин в течение 15 мин для сбора сыворотки. Затем сыворотку хранили во флаконе с завинчивающейся крышкой и хранили при -20 ° C до дальнейшего использования. Измерение биохимических показателей проводили спектрофотометром на анализаторе Humalyzer 2000 (Wiesbaden, Германия).

TLC

Образцы печени на 28 день из различных экспериментальных групп были рассмотрены для качественного тестирования. Сначала образцы смешивали с помощью ступки и пестика. Затем добавляли PBS (pH 6,5) и образцы гомогенизировали с помощью вихревой машины (Vortex-XHC, Wincom, Китай). После этого добавляли 30% трихлоруксусную кислоту и смесь центрифугировали (Hettich D-78532, Германия) при 6000 об / мин в течение 20 минут. Затем супернатант жидкости переносили в пробирку Сокола с равным количеством диэтилового эфира и собирали нижний слой во флакон с завинчивающейся крышкой.Карандашом была сделана тонкая отметка внизу пластинки для ТСХ, чтобы нанести пятна образца. Затем образцы растворов наносили на отмеченные на линии пятна на равных расстояниях. Подвижную фазу заливали в камеру для ТСХ до ровной выемки на несколько сантиметров выше дна камеры. Смоченную фильтровальную бумагу в подвижной фазе помещали на внутреннюю стенку камеры для поддержания равной влажности. Пластину, приготовленную с пятнами образца, затем помещали в камеру для ТСХ так, чтобы сторона пластины с линией образца была обращена к подвижной фазе, и камеру закрывали крышкой. Планшет погружали так, чтобы пятна образца находились значительно выше уровня подвижной фазы для проявления. Планшеты удаляли и давали высохнуть при комнатной температуре. Пятна образца детектировали в подходящей камере УФ-излучения.

Статистический анализ

Данные, полученные при измерении веса, длины и ширины печени, а также биохимических параметров (АЛТ, АСТ и ЩФ), были проанализированы с использованием процедуры повторных измерений в Статистическом пакете программного обеспечения социальных наук версии 19. (IBM Corp., Нью-Йорк, США). Различия между средними были выявлены с помощью множественных тестов Дункана. Уровень значимости был установлен на уровне p <0,05.

Результаты

Общее наблюдение

Общий вид печени

В печени бройлеров контрольной группы серьезных изменений не наблюдалось. Было обнаружено, что цвет печени был красноватым в контрольной группе, тогда как он был бледным у бройлеров группы А. Застой был обнаружен в печени бройлеров группы А на 21 и 28 дни эксперимента (). И геморрагическая, и перегруженная печень были обнаружены у бройлеров группы B () на 14, 21 и 28 дни эксперимента.

Репрезентативные изображения общего наблюдения за печенью различных групп бройлеров. Нормальный внешний вид печени в контрольной группе (а), застойная (черная стрелка) печень в группе A (b), а также застойная (c) и геморрагическая (d) печень наблюдались в группе, получавшей дексаметазон, то есть в группе B

Масса печени

Средняя масса печени в контрольной группе, группе A и группе B на 7-й день составляла 3.63 ± 0,24 г, 3,33 ± 0,42 г и 5,25 ± 1,59 г соответственно (). На 14 день наибольший вес наблюдался в группе А (9,25 ± 0,25 г) по сравнению с контрольной группой (7,3 ± 2,23 г) и группой В (6,55 ± 2,21 г). На 21 день эксперимента самый низкий вес печени был зарегистрирован в группе B (14,75 ± 3,75 г) по сравнению с группой A (28,75 ± 1,93 г). Средний вес печени в контрольной группе, группе A и группе B на 28 день составлял 31,25 ± 3,94 г, 32 ± 2,68 г и 29,25 ± 6,54 г соответственно.

Масса печени бройлеров в разных опытных группах в разные дни опытного периода.

Длина печени

Длина печени указана в. Существенных различий между разными группами цыплят-бройлеров не наблюдалось. Только численное уменьшение длины печени бройлеров группы В наблюдалось на 14 и 21 день эксперимента.

Длина печени в разных опытных группах бройлеров в разные дни экспериментального периода (Среднее ± стандартная ошибка).

Ширина печени

Ширина печени трех опытных групп представлена ​​в.Мы наблюдали более высокие средние значения у бройлеров группы B на 21 день эксперимента по сравнению с контролем и группой A.

Ширина печени (среднее ± стандартная ошибка) у бройлеров разных экспериментальных групп в разные дни эксперимента. Различные буквы в качестве надстрочного индекса указывают на существенные различия между разными группами экспериментов.

Гистологическое наблюдение

Печень контрольной группы была обнаружена с нормальной гистологической архитектурой во все временные точки (). На 21-й и 28-й дни застойные явления в синусоидах и центральной вене были обнаружены в участках печени в группе A (), тогда как в эти моменты времени в группе B наблюдались застойные явления в центральной вене и синусоидах, а также скопление жировых капель. (Цифры- а).

Микрографические изображения срезов печени в контрольной группе (10 × и 40 ×). Печень показывает нормальную гистологическую архитектуру (Xa и Xb) (H и E). CV = Центральная вена; S = синусоиды; H = гепатоциты.

Микрографические изображения срезов печени бройлеров группы А (10 × и 40 ×). Группа A демонстрирует синусоидальный застой (Ya), расширенную и перегруженную центральную вену (Yb) на 21 и 28 день срезов печени (H и E). CCV = застойная центральная вена; CS = скопление синусоид.

Фотомикрографические наблюдения срезов печени в группе B (10 ×, 40 ×). Группа B показывает расширенную и перегруженную центральную вену (Za) и перегруженные синусоиды (белая стрелка) (Zb) на 21 и 28 день срезов печени (H и E). CCV = Застой в центральной вене; CS = скопление синусоидов; H = гепатоциты.

Микрографические изображения срезов печени в группе B (10 ×, 40 ×). Капли липидов (черная стрелка) были замечены в срезах печени (Zc) на 28 день в группе B (H и E). CV = Центральная вена; LP = липидные капли.

Биохимический анализ

В настоящем исследовании функциональный тест печени проводился путем измерения сывороточного уровня трех различных биохимических параметров, то есть АЛТ, АСТ и ЩФ, в трех экспериментальных группах на 7, 14, 21 и 28 дни. (). Уровень АЛТ был значительно увеличен в сыворотке группы В на 14 день по сравнению с группой А, тогда как уровень АСТ и ЩФ оставался неизменным у бройлеров всех групп.

(a-c) Влияние стероидного стимулятора роста на измерение ферментов печени в сыворотке различных групп бройлеров (Среднее ± SE).Различные буквы в качестве надстрочного индекса указывают на существенные различия между разными группами экспериментов.

ТСХ

ТСХ — это твердо-жидкостная хроматография, которую можно использовать для проверки идентичности вещества. В образцах печени качественная идентификация DEX была проведена с помощью ТСХ (). Положительным контролем была группа, получавшая DEX, то есть Группа B; отрицательные результаты были получены в контрольной группе и в группе А, которая поддерживалась коммерческим рационом для бройлеров, показав положительные результаты по сравнению с группой В.

Качественная идентификация стероидных веществ производилась методом тонкослойной хроматографии.

Обсуждение

В настоящем исследовании бройлерам скармливали высокие дозы DEX для наблюдения за влиянием GC на грубые и морфологические изменения печени и на изменения биохимических параметров в сыворотке.

Масса тела

Масса тела бройлеров в группе, получавшей DEX, была снижена по сравнению с контрольной группой и группой А в том же эксперименте, проведенном нашей группой [12].Согласно литературным данным [18], DEX может повышать уровень Т3 в плазме и стимулировать метаболические пути в мышцах, которые ответственны за мышечную дистрофию. Группа ученых [19] заявила, что хроническое употребление кортикостероидов в рационе может стимулировать катаболизм белков, что может подавить набор массы тела и снизить потребление корма цыплятами-бройлерами.

Общее наблюдение за печенью

Печень контрольной группы имела красноватый цвет, тогда как в печени групп A и B.Точечные геморрагические поражения были обнаружены у бройлеров группы B. Аналогичные результаты были также получены Даттани и Брук [7] и утверждали, что застойные явления могут возникать из-за микронодулярного цирроза печени.

В настоящем исследовании самый низкий вес печени был зарегистрирован в группе B. Однако вес печени увеличивался с увеличением возраста бройлеров, что в соответствии с результатами, представленными в Cai et al . [20]. Сообщалось, что доля печени (в% от массы тела) цыплят с инъекцией DEX увеличивается на 34% по сравнению с контролем и на 39% у цыплят, получавших парное вскармливание.Другие исследования также наблюдали заметное увеличение массы печени при лечении кортикостероном (КОРТ) [21-24]. Вероятно, что увеличение массы печени может быть вызвано усиленным синтезом жирных кислот и центральными жировыми отложениями в ответе печени на высокие уровни циркулирующего CORT [25,26]. Результаты по весу печени, полученные в нашем исследовании, противоречат результатам другого исследования, проведенного группой исследователей [27]. Относительная и фактическая масса печени была значительно выше у кур, получавших DEX.

Гистоморфологические наблюдения

В печени контрольной группы наблюдалась нормальная гистологическая архитектура. Однако в группе A были обнаружены застойные центральные вены и синусоиды. В группе B застой наблюдался в центральной вене и синусоидах печени на 21 и 28 дни экспериментального периода. Накопление липидных капель также наблюдалось на 28 день в группе B. Сходные результаты были получены и другими группами [28–31], утверждающими, что хроническое повышение уровня GC может быть связано с повышенным включением жира в печени.ГК стимулируют глюконеогенез в печени и увеличивают синтез и хранение гликогена в печени [30]. В ответ на повышенный уровень глюкозы в крови может наблюдаться компенсаторное увеличение секреции инсулина. Лечение DEX может вызывать зависящие от времени изменения уровней глюкозы и инсулина и увеличение секреции инсулина, что приводит к отложению большего количества гликогена в цитоплазме гепатоцитов с течением времени. Группа исследователей [32] наблюдала небольшую цитоплазматическую вакуолизацию, идентифицированную как липидные капли, затрагивающую несколько гепатоцитов.Кроме того, наблюдалась широкая вакуолизация цитоплазмы в результате внутриклеточного отека и накопления липидов. DEX подавляет синтез арахидоновой кислоты и простагландина, которые обычно действуют как антиагрегантные агенты [30]. Это, вместе с вероятным возникновением гипертонии и полицитемии в печени, могло вызвать расширение и застой синусоид, которые были замечены в группе, получавшей DEX в настоящем исследовании.

Биохимические параметры

Повышение уровня АЛТ, АСТ и ЩФ в сыворотке и тканях является наиболее частым признаком заболеваний печени [17].В настоящем исследовании уровень АЛТ был значительно увеличен в сыворотке группы В на 14 день эксперимента по сравнению с группой А. Повышенный уровень фермента АЛТ, высвобождаемый в кровь, может быть связан с повреждением печени, учитывая, что АЛТ является специфическим. при гепатоцитарном некрозе [33,34].

В настоящем исследовании сывороточные уровни AST и ALP в группах A и B существенно не отличались от контрольной группы. Было показано, что обработка DEX может повышать уровни ALT и AST в сыворотке крови бройлеров в возрасте 3 недель; однако достоверной разницы в значениях АЛТ и АСТ на 4, 5 и 6 неделях не было [35].Аналогичное сообщение было найдено в другом исследовании [36]. Эти результаты по ALT и AST соответствуют результатам настоящего исследования. В другом исследовании было замечено, что сывороточные уровни ALP, AST и ALT могут быть снижены у крыс с низкими и высокими дозами DEX с перевязкой желчных протоков из-за холестаза или диффузного повреждения печени [37]. Они объяснили, что это изменение может быть связано с холестазом или диффузным поражением печени.

Метод скрининга

Поскольку ТСХ оказалась успешным методом скрининга для оценки остатков кортикостероидов в тканях разных видов [9,38], мы выбрали тот же метод для обнаружения присутствия DEX в наших образцах.Группа B, которая получала домашнюю диету с DEX, показала положительный результат в отношении остатков DEX в печени по наличию пятен на хроматографической пластине. Аналогичное наблюдение было сделано другой исследовательской группой [39], где образцы тканей анализировались путем попадания на пластину ультрафиолетового света. Как и предполагалось, образцы бройлеров контрольной группы и группы А показали отрицательный результат. Настоящее исследование показывает, что DEX может откладываться в печени бройлеров в ответ на экзогенный GC DEX.

Заключение

При общем наблюдении мы наблюдали постоянный вес печени у разных групп бройлеров во время эксперимента, за исключением небольшого снижения в группе B.Наблюдалось только численное уменьшение длины печени группы B, тогда как ширина печени увеличивалась в этой группе. Застойная и геморрагическая печень наблюдалась в группе B. Нормальная морфология печени была обнаружена в контрольной группе, тогда как застойные центральные вены и синусоиды наблюдались в группах A и B. Липидные капли накапливались в срезах печени бройлеров группы B на 28 день. Уровень АЛТ был значительно повышен в сыворотке группы В. Уровень АСТ и ЩФ не изменился у бройлеров различных экспериментальных групп.Метод скрининга выявил присутствие DEX в тканях печени бройлеров, которым вводили DEX. Наконец, было обнаружено, что DEX изменяет рост и морфологию печени, а также концентрацию ALT в кровообращении цыплят-бройлеров. DEX может сбалансировать вес печени за счет увеличения ширины и уменьшения длины печени у бройлеров.

Вклад авторов

Н.С.: руководитель исследования, концептуализировал и разработал исследование, а также подготовил и отредактировал рукопись.МА: Провел эксперимент, сбор и анализ данных, составление рукописи. КР: Помогал в проведении эксперимента и сборе данных. Все авторы прочитали и одобрили окончательную версию рукописи.

Благодарности

Мы также хотели бы поблагодарить доктора Лауру Уэбб, Боннский университет, Германия, за вычитку рукописи. Доктор Насрин Султана получил исследовательский фонд (грант № 2018/337 / BAU) от Исследовательской системы Бангладешского сельскохозяйственного университета, BAU, Бангладеш.

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих интересов.

Примечание издателя

Veterinary World сохраняет нейтралитет в отношении юрисдикционных требований в отношении опубликованной институциональной принадлежности.

Ссылки

Влияние стимуляторов роста стероидов на морфологические и биохимические адаптации печени бройлеров

Vet World. 2020 ноя; 13 (11): 2330–2337.

Насрин Султана

¹ Кафедра анатомии и гистологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

Марсия Афросе

¹ desh Кафедра анатомии и гистологии, факультет ветеринарии Бангладеш , Мименсингх, Бангладеш

Кази Рафик

² Кафедра фармакологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

¹ Кафедра анатомии и гистологии, Факультет ветеринарных наук Бангладеш, Бангладешский сельскохозяйственный университет , Бангладеш

² Кафедра фармакологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

Поступила в редакцию 14 июня 2020 г .; Принята в печать 29 сентября 2020 г.

Abstract

Цель:

Исследование было проведено для наблюдения за влиянием дексаметазона (DEX) на общее исследование и гистоморфометрию печени, а также на изменения биохимических параметров бройлеров.

Материалы и методы:

Девяностодневных цыплят были собраны и распределены в одну из трех групп: контрольная, группа A и группа B. Контрольная группа, группа A и группа B кормились в течение 28 дней домашним животным. рацион, коммерческий рацион для бройлеров и домашний рацион с DEX (7 мг / кг корма), соответственно.Образцы печени собирали у отдельных птиц после умерщвления на 7, 14, 21 и 28 дни эксперимента. Изучены морфометрические характеристики (длина, вес, цвет, текстура) печени. Гистоморфологические изменения печени оценивали с помощью стандартного окрашивания гематоксилином и эозином. Для измерения биохимических показателей образцы крови отбирали на 7, 14, 21 и 28 дни эксперимента. Функциональный тест печени проводился спектрофотометрически путем анализа биохимических маркеров сыворотки крови, то есть аланинаминотрансферазы (АЛТ), аспартатаминотрансферазы и щелочной фосфатазы (ЩФ).Для обнаружения печеночных стероидов выполняли тонкослойную хроматографию (ТСХ).

Результаты:

Геморрагия и гиперемия печени были обнаружены у бройлеров группы B. Не было обнаружено значительных изменений в весе и длине печени; У птиц группы B наблюдалось только численное уменьшение веса и длины. Ширина печени увеличилась в группе B на 21 день. Гистологическое исследование печени показало накопление липидных капель, скопление синусоидов и центральных вен у бройлеров группы B.Биохимические анализы показали повышенные уровни ALT в группе B по сравнению с группой A на 14 день эксперимента. Оценка ТСХ показала положительный результат в группе В на 28 день эксперимента.

Заключение:

Результаты настоящего исследования показывают, что DEX может изменять морфологию печени и концентрацию АЛТ в циркуляции бройлеров.

Ключевые слова: бройлер, дексаметазон, стимулятор роста, печень

Введение

В настоящее время птицеводство становится ведущей отраслью сельского хозяйства Бангладеш.В течение последних двух десятилетий этот сектор рос примерно на 35% в год [1]. Эта отрасль обладает огромным потенциалом для ускорения экономического роста страны, а также обеспечения продовольственной безопасности. Совместное исследование IFPRI / FAO / ILRI показало, что мировое производство и потребление мяса будет продолжать расти с 233 миллионов метрических тонн (МТ) в 2000 году до 300 миллионов МТ в 2020 году, при этом производство мяса птицы увеличится с 9 МТ в 1960 году. до 68 тонн в 2000 г. из-за увеличения национального спроса [2].Это привело к открытию и широкому использованию ряда «стимуляторов роста (GP)». ГП добавляются в рацион с целью повышения продуктивности животных за счет увеличения скорости роста, повышения эффективности преобразования корма, увеличения выживаемости и снижения смертности домашней птицы [3]. Кроме того, терапевты становятся все более популярными в качестве кормовых добавок из-за их благоприятного воздействия на здоровье кишечника и иммунитет [4,5].

Глюкокортикоиды (ГК) — стероидные гормоны, содержащие как природные, так и синтетические производные [6].Из коры надпочечников разных видов выделено более 50 стероидов [7]. Только несколько стероидов в первую очередь ответственны за влияние коры надпочечников на углеводный, белковый и жировой обмен. Таким образом, эффекты, опосредованные ГК, включают, например, усиление глюконеогенеза, снижение периферической утилизации глюкозы, усиление антагонизма к инсулину, усиление катаболизма белков, снижение накопления жира и стимулированные противовоспалительные эффекты [8], включая уменьшение циркулирующих лимфоцитов, эозинофилов и фиксированных лимфоцитарные ткани и уменьшение местных воспалительных процессов [9].Дексаметазон (DEX) представляет собой синтетическое производное ГК, основное терапевтическое использование которого связано с его противовоспалительными и иммунодепрессивными свойствами [8]. Большая часть DEX, используемого в ветеринарии, предназначена для борьбы с воспалениями или аллергией. Таким образом, злоупотребление кортикостероидом в этой категории не является редкостью. В мясном скотоводстве DEX обычно используется для повышения показателей роста крупного рогатого скота [6,10,11]. Незаконное употребление стероидов GP в высоких дозах, то есть 7 мг / кг [12], и их остатки в пищевых продуктах могут негативно повлиять на умственное и физическое развитие детей и фертильность женщин, вызвать рак и повредить жизненно важные органы, такие как мозг, печень и т. Д. почки и сердце [13].Из-за этих проблем со здоровьем некоторые стероидные терапевты были запрещены к использованию у животных, производящих пищу, Европейским Союзом (ЕС) [14,15]. Чтобы защитить здоровье потребителей от любых потенциальных рисков, ЕС одобрил использование DEX в животноводстве только в терапевтических целях и установил соответствующие максимальные пределы остатков в тканях и молоке, предназначенном для потребления человеком (Совет Европейских сообществ 1990 г., Постановление Совета 90/2377 / EEC) [14].

Печень, самая большая железа в организме, используется для фильтрации вредных токсинов из крови и для синтеза витаминов и минералов.Это также важно для баланса уровней белков, холестерина и сахаров. Кроме того, печень используется для производства желчи, помогающей переваривать пищу. В общем, ГК могут вызывать подавление иммунитета, что приводит к неспецифическому росту бактерий, вирусов и паразитов в организме, а токсины этих микробов также могут вызывать повреждение печени. ГК являются ферментативными и термостойкими и обычно откладываются в печени [16], что приводит к гепатотоксичности. Из-за гепатотоксичности некоторые специфические для печени ферменты (аланинаминотрансфераза [ALT], аспартатаминотрансфераза [AST] и щелочная фосфатаза [ALP]) могут выделяться в кровь.В общем, повышенные концентрации циркулирующих ферментов являются показателями острого поражения органа, а не снижения функции органа. Повышение концентрации АСТ и АЛТ в плазме является наиболее специфическим индикатором повреждения клеток печени [17].

Настоящее исследование направлено на изучение гистоморфологии печени и изменений биохимических параметров крови бройлеров в ответ на стероид GP DEX.

Материалы и методы

Этическое разрешение

Все процедуры обращения с животными соответствовали правилам ухода и использования, установленным Комитетом по благополучию животных и этике экспериментов, Сельскохозяйственный комитет Бангладеш, Мименсингх (AWEEC / BAU / 2019 [23]) .

Птицы и менеджмент

Настоящий эксперимент проводился в январе 2019 года на кафедре анатомии и гистологии Бангладешского сельскохозяйственного университета, Мименсингх-2202. Для эксперимента рассматривали девяностодневных цыплят (DOC) линии «Cobb 500». Их выращивали в помещении с контролируемой средой в течение 28 дней в экспериментальном сарае. Бройлеров кормили стандартным стартовым рационом и рационом откорма бройлеров на протяжении всего экспериментального периода.

Схема эксперимента

Всего 90 бройлеров DOC «Cobb 500» случайным образом были разделены на три равные группы (каждая n = 30): контрольная группа, группа A и группа B.Птицы контрольной группы, группы A и группы B выращивались на домашнем рационе бройлеров, коммерческом рационе бройлеров и домашнем рационе бройлеров с высокой дозой DEX, соответственно. Образцы крови из крыловой вены и образцы печени собирали на 7, 14, 21 и 28 дни экспериментального периода. Образцы печени были взяты в асептических условиях у каждого бройлера для общего наблюдения, гистологического исследования и тонкослойной хроматографии (ТСХ).

Опытный рацион

Птица контрольной группы выращивалась на домашнем рационе бройлеров.Бройлеры группы А были выращены на бройлерном рационе коммерческого типа. Бройлеры группы B выращивались на домашнем рационе бройлеров, включающем высокую дозу добавки DEX (7,0 мг / кг массы тела) в корме. Коммерческий рацион был привезен компанией Nourish Poultry and Hatchery Ltd., Бангладеш. Домашний рацион был составлен в соответствии с ингредиентами коммерческого рациона (). Каждый ингредиент рациона готовился отдельно, а затем смешивался с домашним рационом.

Таблица-1

Кормовые ингредиенты и химический состав рациона.

3

Общее исследование

При общем исследовании учитывались такие параметры, как цвет, длина и вес. Цвет печени сравнивали в контрольной и опытной группах путем визуального наблюдения.Длина и ширина печени у разных групп измеряли по градуированной шкале.

Гистология печени

Образцы печени были быстро удалены и сохранены в 10% нейтральном забуференном формалине. После 24-часового периода фиксации ткани обезвоживали, а затем заливали парафином. Парафиновые блоки разрезали на срезы толщиной 6 мкм с помощью скользящего микротома (MIC 509, Euromex, Япония). Образцы помещали на предметные стекла, сушили в течение ночи, а затем окрашивали гематоксилином и эозином для определения морфологических изменений.

Биохимические исследования

Пять миллилитров крови были собраны без антикоагулянта в стерильные стеклянные пробирки. Пробирки с кровью помещали в наклонное положение при комнатной температуре для свертывания. Затем пробирки помещали в холодильник на ночь при 4 ° C. Кровь центрифугировали при 1000 об / мин в течение 15 мин для сбора сыворотки. Затем сыворотку хранили во флаконе с завинчивающейся крышкой и хранили при -20 ° C до дальнейшего использования. Измерение биохимических показателей проводили спектрофотометром на анализаторе Humalyzer 2000 (Wiesbaden, Германия).

TLC

Образцы печени на 28 день из различных экспериментальных групп были рассмотрены для качественного тестирования. Сначала образцы смешивали с помощью ступки и пестика. Затем добавляли PBS (pH 6,5) и образцы гомогенизировали с помощью вихревой машины (Vortex-XHC, Wincom, Китай). После этого добавляли 30% трихлоруксусную кислоту и смесь центрифугировали (Hettich D-78532, Германия) при 6000 об / мин в течение 20 минут. Затем супернатант жидкости переносили в пробирку Сокола с равным количеством диэтилового эфира и собирали нижний слой во флакон с завинчивающейся крышкой.Карандашом была сделана тонкая отметка внизу пластинки для ТСХ, чтобы нанести пятна образца. Затем образцы растворов наносили на отмеченные на линии пятна на равных расстояниях. Подвижную фазу заливали в камеру для ТСХ до ровной выемки на несколько сантиметров выше дна камеры. Смоченную фильтровальную бумагу в подвижной фазе помещали на внутреннюю стенку камеры для поддержания равной влажности. Пластину, приготовленную с пятнами образца, затем помещали в камеру для ТСХ так, чтобы сторона пластины с линией образца была обращена к подвижной фазе, и камеру закрывали крышкой.Планшет погружали так, чтобы пятна образца находились значительно выше уровня подвижной фазы для проявления. Планшеты удаляли и давали высохнуть при комнатной температуре. Пятна образца детектировали в подходящей камере УФ-излучения.

Статистический анализ

Данные, полученные при измерении веса, длины и ширины печени, а также биохимических параметров (АЛТ, АСТ и ЩФ), были проанализированы с использованием процедуры повторных измерений в Статистическом пакете программного обеспечения социальных наук версии 19. (IBM Corp., Нью-Йорк, США). Различия между средними были выявлены с помощью множественных тестов Дункана. Уровень значимости был установлен на уровне p <0,05.

Результаты

Общее наблюдение

Общий вид печени

В печени бройлеров контрольной группы серьезных изменений не наблюдалось. Было обнаружено, что цвет печени был красноватым в контрольной группе, тогда как он был бледным у бройлеров группы А. Застой был обнаружен в печени бройлеров группы А на 21 и 28 дни эксперимента ().И геморрагическая, и перегруженная печень были обнаружены у бройлеров группы B () на 14, 21 и 28 дни эксперимента.

Репрезентативные изображения общего наблюдения за печенью различных групп бройлеров. Нормальный внешний вид печени в контрольной группе (а), застойная (черная стрелка) печень в группе A (b), а также застойная (c) и геморрагическая (d) печень наблюдались в группе, получавшей дексаметазон, то есть в группе B

Масса печени

Средняя масса печени в контрольной группе, группе A и группе B на 7-й день составляла 3.63 ± 0,24 г, 3,33 ± 0,42 г и 5,25 ± 1,59 г соответственно (). На 14 день наибольший вес наблюдался в группе А (9,25 ± 0,25 г) по сравнению с контрольной группой (7,3 ± 2,23 г) и группой В (6,55 ± 2,21 г). На 21 день эксперимента самый низкий вес печени был зарегистрирован в группе B (14,75 ± 3,75 г) по сравнению с группой A (28,75 ± 1,93 г). Средний вес печени в контрольной группе, группе A и группе B на 28 день составлял 31,25 ± 3,94 г, 32 ± 2,68 г и 29,25 ± 6,54 г соответственно.

Масса печени бройлеров в разных опытных группах в разные дни опытного периода.

Длина печени

Длина печени указана в. Существенных различий между разными группами цыплят-бройлеров не наблюдалось. Только численное уменьшение длины печени бройлеров группы В наблюдалось на 14 и 21 день эксперимента.

Длина печени в разных опытных группах бройлеров в разные дни экспериментального периода (Среднее ± стандартная ошибка).

Ширина печени

Ширина печени трех опытных групп представлена ​​в.Мы наблюдали более высокие средние значения у бройлеров группы B на 21 день эксперимента по сравнению с контролем и группой A.

Ширина печени (среднее ± стандартная ошибка) у бройлеров разных экспериментальных групп в разные дни эксперимента. Различные буквы в качестве надстрочного индекса указывают на существенные различия между разными группами экспериментов.

Гистологическое наблюдение

Печень контрольной группы была обнаружена с нормальной гистологической архитектурой во все временные точки (). На 21-й и 28-й дни застойные явления в синусоидах и центральной вене были обнаружены в участках печени в группе A (), тогда как в эти моменты времени в группе B наблюдались застойные явления в центральной вене и синусоидах, а также скопление жировых капель. (Цифры- а).

Микрографические изображения срезов печени в контрольной группе (10 × и 40 ×). Печень показывает нормальную гистологическую архитектуру (Xa и Xb) (H и E). CV = Центральная вена; S = синусоиды; H = гепатоциты.

Микрографические изображения срезов печени бройлеров группы А (10 × и 40 ×). Группа A демонстрирует синусоидальный застой (Ya), расширенную и перегруженную центральную вену (Yb) на 21 и 28 день срезов печени (H и E). CCV = застойная центральная вена; CS = скопление синусоид.

Фотомикрографические наблюдения срезов печени в группе B (10 ×, 40 ×). Группа B показывает расширенную и перегруженную центральную вену (Za) и перегруженные синусоиды (белая стрелка) (Zb) на 21 и 28 день срезов печени (H и E). CCV = Застой в центральной вене; CS = скопление синусоидов; H = гепатоциты.

Микрографические изображения срезов печени в группе B (10 ×, 40 ×). Капли липидов (черная стрелка) были замечены в срезах печени (Zc) на 28 день в группе B (H и E). CV = Центральная вена; LP = липидные капли.

Биохимический анализ

В настоящем исследовании функциональный тест печени проводился путем измерения сывороточного уровня трех различных биохимических параметров, то есть АЛТ, АСТ и ЩФ, в трех экспериментальных группах на 7, 14, 21 и 28 дни. (). Уровень АЛТ был значительно увеличен в сыворотке группы В на 14 день по сравнению с группой А, тогда как уровень АСТ и ЩФ оставался неизменным у бройлеров всех групп.

(a-c) Влияние стероидного стимулятора роста на измерение ферментов печени в сыворотке различных групп бройлеров (Среднее ± SE).Различные буквы в качестве надстрочного индекса указывают на существенные различия между разными группами экспериментов.

ТСХ

ТСХ — это твердо-жидкостная хроматография, которую можно использовать для проверки идентичности вещества. В образцах печени качественная идентификация DEX была проведена с помощью ТСХ (). Положительным контролем была группа, получавшая DEX, то есть Группа B; отрицательные результаты были получены в контрольной группе и в группе А, которая поддерживалась коммерческим рационом для бройлеров, показав положительные результаты по сравнению с группой В.

Качественная идентификация стероидных веществ производилась методом тонкослойной хроматографии.

Обсуждение

В настоящем исследовании бройлерам скармливали высокие дозы DEX для наблюдения за влиянием GC на грубые и морфологические изменения печени и на изменения биохимических параметров в сыворотке.

Масса тела

Масса тела бройлеров в группе, получавшей DEX, была снижена по сравнению с контрольной группой и группой А в том же эксперименте, проведенном нашей группой [12].Согласно литературным данным [18], DEX может повышать уровень Т3 в плазме и стимулировать метаболические пути в мышцах, которые ответственны за мышечную дистрофию. Группа ученых [19] заявила, что хроническое употребление кортикостероидов в рационе может стимулировать катаболизм белков, что может подавить набор массы тела и снизить потребление корма цыплятами-бройлерами.

Общее наблюдение за печенью

Печень контрольной группы имела красноватый цвет, тогда как в печени групп A и B.Точечные геморрагические поражения были обнаружены у бройлеров группы B. Аналогичные результаты были также получены Даттани и Брук [7] и утверждали, что застойные явления могут возникать из-за микронодулярного цирроза печени.

В настоящем исследовании самый низкий вес печени был зарегистрирован в группе B. Однако вес печени увеличивался с увеличением возраста бройлеров, что в соответствии с результатами, представленными в Cai et al . [20]. Сообщалось, что доля печени (в% от массы тела) цыплят с инъекцией DEX увеличивается на 34% по сравнению с контролем и на 39% у цыплят, получавших парное вскармливание.Другие исследования также наблюдали заметное увеличение массы печени при лечении кортикостероном (КОРТ) [21-24]. Вероятно, что увеличение массы печени может быть вызвано усиленным синтезом жирных кислот и центральными жировыми отложениями в ответе печени на высокие уровни циркулирующего CORT [25,26]. Результаты по весу печени, полученные в нашем исследовании, противоречат результатам другого исследования, проведенного группой исследователей [27]. Относительная и фактическая масса печени была значительно выше у кур, получавших DEX.

Гистоморфологические наблюдения

В печени контрольной группы наблюдалась нормальная гистологическая архитектура. Однако в группе A были обнаружены застойные центральные вены и синусоиды. В группе B застой наблюдался в центральной вене и синусоидах печени на 21 и 28 дни экспериментального периода. Накопление липидных капель также наблюдалось на 28 день в группе B. Сходные результаты были получены и другими группами [28–31], утверждающими, что хроническое повышение уровня GC может быть связано с повышенным включением жира в печени.ГК стимулируют глюконеогенез в печени и увеличивают синтез и хранение гликогена в печени [30]. В ответ на повышенный уровень глюкозы в крови может наблюдаться компенсаторное увеличение секреции инсулина. Лечение DEX может вызывать зависящие от времени изменения уровней глюкозы и инсулина и увеличение секреции инсулина, что приводит к отложению большего количества гликогена в цитоплазме гепатоцитов с течением времени. Группа исследователей [32] наблюдала небольшую цитоплазматическую вакуолизацию, идентифицированную как липидные капли, затрагивающую несколько гепатоцитов.Кроме того, наблюдалась широкая вакуолизация цитоплазмы в результате внутриклеточного отека и накопления липидов. DEX подавляет синтез арахидоновой кислоты и простагландина, которые обычно действуют как антиагрегантные агенты [30]. Это, вместе с вероятным возникновением гипертонии и полицитемии в печени, могло вызвать расширение и застой синусоид, которые были замечены в группе, получавшей DEX в настоящем исследовании.

Биохимические параметры

Повышение уровня АЛТ, АСТ и ЩФ в сыворотке и тканях является наиболее частым признаком заболеваний печени [17].В настоящем исследовании уровень АЛТ был значительно увеличен в сыворотке группы В на 14 день эксперимента по сравнению с группой А. Повышенный уровень фермента АЛТ, высвобождаемый в кровь, может быть связан с повреждением печени, учитывая, что АЛТ является специфическим. при гепатоцитарном некрозе [33,34].

В настоящем исследовании сывороточные уровни AST и ALP в группах A и B существенно не отличались от контрольной группы. Было показано, что обработка DEX может повышать уровни ALT и AST в сыворотке крови бройлеров в возрасте 3 недель; однако достоверной разницы в значениях АЛТ и АСТ на 4, 5 и 6 неделях не было [35].Аналогичное сообщение было найдено в другом исследовании [36]. Эти результаты по ALT и AST соответствуют результатам настоящего исследования. В другом исследовании было замечено, что сывороточные уровни ALP, AST и ALT могут быть снижены у крыс с низкими и высокими дозами DEX с перевязкой желчных протоков из-за холестаза или диффузного повреждения печени [37]. Они объяснили, что это изменение может быть связано с холестазом или диффузным поражением печени.

Метод скрининга

Поскольку ТСХ оказалась успешным методом скрининга для оценки остатков кортикостероидов в тканях разных видов [9,38], мы выбрали тот же метод для обнаружения присутствия DEX в наших образцах.Группа B, которая получала домашнюю диету с DEX, показала положительный результат в отношении остатков DEX в печени по наличию пятен на хроматографической пластине. Аналогичное наблюдение было сделано другой исследовательской группой [39], где образцы тканей анализировались путем попадания на пластину ультрафиолетового света. Как и предполагалось, образцы бройлеров контрольной группы и группы А показали отрицательный результат. Настоящее исследование показывает, что DEX может откладываться в печени бройлеров в ответ на экзогенный GC DEX.

Заключение

При общем наблюдении мы наблюдали постоянный вес печени у разных групп бройлеров во время эксперимента, за исключением небольшого снижения в группе B.Наблюдалось только численное уменьшение длины печени группы B, тогда как ширина печени увеличивалась в этой группе. Застойная и геморрагическая печень наблюдалась в группе B. Нормальная морфология печени была обнаружена в контрольной группе, тогда как застойные центральные вены и синусоиды наблюдались в группах A и B. Липидные капли накапливались в срезах печени бройлеров группы B на 28 день. Уровень АЛТ был значительно повышен в сыворотке группы В. Уровень АСТ и ЩФ не изменился у бройлеров различных экспериментальных групп.Метод скрининга выявил присутствие DEX в тканях печени бройлеров, которым вводили DEX. Наконец, было обнаружено, что DEX изменяет рост и морфологию печени, а также концентрацию ALT в кровообращении цыплят-бройлеров. DEX может сбалансировать вес печени за счет увеличения ширины и уменьшения длины печени у бройлеров.

Вклад авторов

Н.С.: руководитель исследования, концептуализировал и разработал исследование, а также подготовил и отредактировал рукопись.МА: Провел эксперимент, сбор и анализ данных, составление рукописи. КР: Помогал в проведении эксперимента и сборе данных. Все авторы прочитали и одобрили окончательную версию рукописи.

Благодарности

Мы также хотели бы поблагодарить доктора Лауру Уэбб, Боннский университет, Германия, за вычитку рукописи. Доктор Насрин Султана получил исследовательский фонд (грант № 2018/337 / BAU) от Исследовательской системы Бангладешского сельскохозяйственного университета, BAU, Бангладеш.

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих интересов.

Примечание издателя

Veterinary World сохраняет нейтралитет в отношении юрисдикционных требований в отношении опубликованной институциональной принадлежности.

Ссылки

Влияние стимуляторов роста стероидов на морфологические и биохимические адаптации печени бройлеров

Vet World. 2020 ноя; 13 (11): 2330–2337.

Насрин Султана

¹ Кафедра анатомии и гистологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

Марсия Афросе

¹ desh Кафедра анатомии и гистологии, факультет ветеринарии Бангладеш , Мименсингх, Бангладеш

Кази Рафик

² Кафедра фармакологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

¹ Кафедра анатомии и гистологии, Факультет ветеринарных наук Бангладеш, Бангладешский сельскохозяйственный университет , Бангладеш

² Кафедра фармакологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

Поступила в редакцию 14 июня 2020 г .; Принята в печать 29 сентября 2020 г.

Abstract

Цель:

Исследование было проведено для наблюдения за влиянием дексаметазона (DEX) на общее исследование и гистоморфометрию печени, а также на изменения биохимических параметров бройлеров.

Материалы и методы:

Девяностодневных цыплят были собраны и распределены в одну из трех групп: контрольная, группа A и группа B. Контрольная группа, группа A и группа B кормились в течение 28 дней домашним животным. рацион, коммерческий рацион для бройлеров и домашний рацион с DEX (7 мг / кг корма), соответственно.Образцы печени собирали у отдельных птиц после умерщвления на 7, 14, 21 и 28 дни эксперимента. Изучены морфометрические характеристики (длина, вес, цвет, текстура) печени. Гистоморфологические изменения печени оценивали с помощью стандартного окрашивания гематоксилином и эозином. Для измерения биохимических показателей образцы крови отбирали на 7, 14, 21 и 28 дни эксперимента. Функциональный тест печени проводился спектрофотометрически путем анализа биохимических маркеров сыворотки крови, то есть аланинаминотрансферазы (АЛТ), аспартатаминотрансферазы и щелочной фосфатазы (ЩФ).Для обнаружения печеночных стероидов выполняли тонкослойную хроматографию (ТСХ).

Результаты:

Геморрагия и гиперемия печени были обнаружены у бройлеров группы B. Не было обнаружено значительных изменений в весе и длине печени; У птиц группы B наблюдалось только численное уменьшение веса и длины. Ширина печени увеличилась в группе B на 21 день. Гистологическое исследование печени показало накопление липидных капель, скопление синусоидов и центральных вен у бройлеров группы B.Биохимические анализы показали повышенные уровни ALT в группе B по сравнению с группой A на 14 день эксперимента. Оценка ТСХ показала положительный результат в группе В на 28 день эксперимента.

Заключение:

Результаты настоящего исследования показывают, что DEX может изменять морфологию печени и концентрацию АЛТ в циркуляции бройлеров.

Ключевые слова: бройлер, дексаметазон, стимулятор роста, печень

Введение

В настоящее время птицеводство становится ведущей отраслью сельского хозяйства Бангладеш.В течение последних двух десятилетий этот сектор рос примерно на 35% в год [1]. Эта отрасль обладает огромным потенциалом для ускорения экономического роста страны, а также обеспечения продовольственной безопасности. Совместное исследование IFPRI / FAO / ILRI показало, что мировое производство и потребление мяса будет продолжать расти с 233 миллионов метрических тонн (МТ) в 2000 году до 300 миллионов МТ в 2020 году, при этом производство мяса птицы увеличится с 9 МТ в 1960 году. до 68 тонн в 2000 г. из-за увеличения национального спроса [2].Это привело к открытию и широкому использованию ряда «стимуляторов роста (GP)». ГП добавляются в рацион с целью повышения продуктивности животных за счет увеличения скорости роста, повышения эффективности преобразования корма, увеличения выживаемости и снижения смертности домашней птицы [3]. Кроме того, терапевты становятся все более популярными в качестве кормовых добавок из-за их благоприятного воздействия на здоровье кишечника и иммунитет [4,5].

Глюкокортикоиды (ГК) — стероидные гормоны, содержащие как природные, так и синтетические производные [6].Из коры надпочечников разных видов выделено более 50 стероидов [7]. Только несколько стероидов в первую очередь ответственны за влияние коры надпочечников на углеводный, белковый и жировой обмен. Таким образом, эффекты, опосредованные ГК, включают, например, усиление глюконеогенеза, снижение периферической утилизации глюкозы, усиление антагонизма к инсулину, усиление катаболизма белков, снижение накопления жира и стимулированные противовоспалительные эффекты [8], включая уменьшение циркулирующих лимфоцитов, эозинофилов и фиксированных лимфоцитарные ткани и уменьшение местных воспалительных процессов [9].Дексаметазон (DEX) представляет собой синтетическое производное ГК, основное терапевтическое использование которого связано с его противовоспалительными и иммунодепрессивными свойствами [8]. Большая часть DEX, используемого в ветеринарии, предназначена для борьбы с воспалениями или аллергией. Таким образом, злоупотребление кортикостероидом в этой категории не является редкостью. В мясном скотоводстве DEX обычно используется для повышения показателей роста крупного рогатого скота [6,10,11]. Незаконное употребление стероидов GP в высоких дозах, то есть 7 мг / кг [12], и их остатки в пищевых продуктах могут негативно повлиять на умственное и физическое развитие детей и фертильность женщин, вызвать рак и повредить жизненно важные органы, такие как мозг, печень и т. Д. почки и сердце [13].Из-за этих проблем со здоровьем некоторые стероидные терапевты были запрещены к использованию у животных, производящих пищу, Европейским Союзом (ЕС) [14,15]. Чтобы защитить здоровье потребителей от любых потенциальных рисков, ЕС одобрил использование DEX в животноводстве только в терапевтических целях и установил соответствующие максимальные пределы остатков в тканях и молоке, предназначенном для потребления человеком (Совет Европейских сообществ 1990 г., Постановление Совета 90/2377 / EEC) [14].

Печень, самая большая железа в организме, используется для фильтрации вредных токсинов из крови и для синтеза витаминов и минералов.Это также важно для баланса уровней белков, холестерина и сахаров. Кроме того, печень используется для производства желчи, помогающей переваривать пищу. В общем, ГК могут вызывать подавление иммунитета, что приводит к неспецифическому росту бактерий, вирусов и паразитов в организме, а токсины этих микробов также могут вызывать повреждение печени. ГК являются ферментативными и термостойкими и обычно откладываются в печени [16], что приводит к гепатотоксичности. Из-за гепатотоксичности некоторые специфические для печени ферменты (аланинаминотрансфераза [ALT], аспартатаминотрансфераза [AST] и щелочная фосфатаза [ALP]) могут выделяться в кровь.В общем, повышенные концентрации циркулирующих ферментов являются показателями острого поражения органа, а не снижения функции органа. Повышение концентрации АСТ и АЛТ в плазме является наиболее специфическим индикатором повреждения клеток печени [17].

Настоящее исследование направлено на изучение гистоморфологии печени и изменений биохимических параметров крови бройлеров в ответ на стероид GP DEX.

Материалы и методы

Этическое разрешение

Все процедуры обращения с животными соответствовали правилам ухода и использования, установленным Комитетом по благополучию животных и этике экспериментов, Сельскохозяйственный комитет Бангладеш, Мименсингх (AWEEC / BAU / 2019 [23]) .

Птицы и менеджмент

Настоящий эксперимент проводился в январе 2019 года на кафедре анатомии и гистологии Бангладешского сельскохозяйственного университета, Мименсингх-2202. Для эксперимента рассматривали девяностодневных цыплят (DOC) линии «Cobb 500». Их выращивали в помещении с контролируемой средой в течение 28 дней в экспериментальном сарае. Бройлеров кормили стандартным стартовым рационом и рационом откорма бройлеров на протяжении всего экспериментального периода.

Схема эксперимента

Всего 90 бройлеров DOC «Cobb 500» случайным образом были разделены на три равные группы (каждая n = 30): контрольная группа, группа A и группа B.Птицы контрольной группы, группы A и группы B выращивались на домашнем рационе бройлеров, коммерческом рационе бройлеров и домашнем рационе бройлеров с высокой дозой DEX, соответственно. Образцы крови из крыловой вены и образцы печени собирали на 7, 14, 21 и 28 дни экспериментального периода. Образцы печени были взяты в асептических условиях у каждого бройлера для общего наблюдения, гистологического исследования и тонкослойной хроматографии (ТСХ).

Опытный рацион

Птица контрольной группы выращивалась на домашнем рационе бройлеров.Бройлеры группы А были выращены на бройлерном рационе коммерческого типа. Бройлеры группы B выращивались на домашнем рационе бройлеров, включающем высокую дозу добавки DEX (7,0 мг / кг массы тела) в корме. Коммерческий рацион был привезен компанией Nourish Poultry and Hatchery Ltd., Бангладеш. Домашний рацион был составлен в соответствии с ингредиентами коммерческого рациона (). Каждый ингредиент рациона готовился отдельно, а затем смешивался с домашним рационом.

Таблица-1

Кормовые ингредиенты и химический состав рациона.

3

Общее исследование

При общем исследовании учитывались такие параметры, как цвет, длина и вес. Цвет печени сравнивали в контрольной и опытной группах путем визуального наблюдения.Длина и ширина печени у разных групп измеряли по градуированной шкале.

Гистология печени

Образцы печени были быстро удалены и сохранены в 10% нейтральном забуференном формалине. После 24-часового периода фиксации ткани обезвоживали, а затем заливали парафином. Парафиновые блоки разрезали на срезы толщиной 6 мкм с помощью скользящего микротома (MIC 509, Euromex, Япония). Образцы помещали на предметные стекла, сушили в течение ночи, а затем окрашивали гематоксилином и эозином для определения морфологических изменений.

Биохимические исследования

Пять миллилитров крови были собраны без антикоагулянта в стерильные стеклянные пробирки. Пробирки с кровью помещали в наклонное положение при комнатной температуре для свертывания. Затем пробирки помещали в холодильник на ночь при 4 ° C. Кровь центрифугировали при 1000 об / мин в течение 15 мин для сбора сыворотки. Затем сыворотку хранили во флаконе с завинчивающейся крышкой и хранили при -20 ° C до дальнейшего использования. Измерение биохимических показателей проводили спектрофотометром на анализаторе Humalyzer 2000 (Wiesbaden, Германия).

TLC

Образцы печени на 28 день из различных экспериментальных групп были рассмотрены для качественного тестирования. Сначала образцы смешивали с помощью ступки и пестика. Затем добавляли PBS (pH 6,5) и образцы гомогенизировали с помощью вихревой машины (Vortex-XHC, Wincom, Китай). После этого добавляли 30% трихлоруксусную кислоту и смесь центрифугировали (Hettich D-78532, Германия) при 6000 об / мин в течение 20 минут. Затем супернатант жидкости переносили в пробирку Сокола с равным количеством диэтилового эфира и собирали нижний слой во флакон с завинчивающейся крышкой.Карандашом была сделана тонкая отметка внизу пластинки для ТСХ, чтобы нанести пятна образца. Затем образцы растворов наносили на отмеченные на линии пятна на равных расстояниях. Подвижную фазу заливали в камеру для ТСХ до ровной выемки на несколько сантиметров выше дна камеры. Смоченную фильтровальную бумагу в подвижной фазе помещали на внутреннюю стенку камеры для поддержания равной влажности. Пластину, приготовленную с пятнами образца, затем помещали в камеру для ТСХ так, чтобы сторона пластины с линией образца была обращена к подвижной фазе, и камеру закрывали крышкой.Планшет погружали так, чтобы пятна образца находились значительно выше уровня подвижной фазы для проявления. Планшеты удаляли и давали высохнуть при комнатной температуре. Пятна образца детектировали в подходящей камере УФ-излучения.

Статистический анализ

Данные, полученные при измерении веса, длины и ширины печени, а также биохимических параметров (АЛТ, АСТ и ЩФ), были проанализированы с использованием процедуры повторных измерений в Статистическом пакете программного обеспечения социальных наук версии 19. (IBM Corp., Нью-Йорк, США). Различия между средними были выявлены с помощью множественных тестов Дункана. Уровень значимости был установлен на уровне p <0,05.

Результаты

Общее наблюдение

Общий вид печени

В печени бройлеров контрольной группы серьезных изменений не наблюдалось. Было обнаружено, что цвет печени был красноватым в контрольной группе, тогда как он был бледным у бройлеров группы А. Застой был обнаружен в печени бройлеров группы А на 21 и 28 дни эксперимента ().И геморрагическая, и перегруженная печень были обнаружены у бройлеров группы B () на 14, 21 и 28 дни эксперимента.

Репрезентативные изображения общего наблюдения за печенью различных групп бройлеров. Нормальный внешний вид печени в контрольной группе (а), застойная (черная стрелка) печень в группе A (b), а также застойная (c) и геморрагическая (d) печень наблюдались в группе, получавшей дексаметазон, то есть в группе B

Масса печени

Средняя масса печени в контрольной группе, группе A и группе B на 7-й день составляла 3.63 ± 0,24 г, 3,33 ± 0,42 г и 5,25 ± 1,59 г соответственно (). На 14 день наибольший вес наблюдался в группе А (9,25 ± 0,25 г) по сравнению с контрольной группой (7,3 ± 2,23 г) и группой В (6,55 ± 2,21 г). На 21 день эксперимента самый низкий вес печени был зарегистрирован в группе B (14,75 ± 3,75 г) по сравнению с группой A (28,75 ± 1,93 г). Средний вес печени в контрольной группе, группе A и группе B на 28 день составлял 31,25 ± 3,94 г, 32 ± 2,68 г и 29,25 ± 6,54 г соответственно.

Масса печени бройлеров в разных опытных группах в разные дни опытного периода.

Длина печени

Длина печени указана в. Существенных различий между разными группами цыплят-бройлеров не наблюдалось. Только численное уменьшение длины печени бройлеров группы В наблюдалось на 14 и 21 день эксперимента.

Длина печени в разных опытных группах бройлеров в разные дни экспериментального периода (Среднее ± стандартная ошибка).

Ширина печени

Ширина печени трех опытных групп представлена ​​в.Мы наблюдали более высокие средние значения у бройлеров группы B на 21 день эксперимента по сравнению с контролем и группой A.

Ширина печени (среднее ± стандартная ошибка) у бройлеров разных экспериментальных групп в разные дни эксперимента. Различные буквы в качестве надстрочного индекса указывают на существенные различия между разными группами экспериментов.

Гистологическое наблюдение

Печень контрольной группы была обнаружена с нормальной гистологической архитектурой во все временные точки (). На 21-й и 28-й дни застойные явления в синусоидах и центральной вене были обнаружены в участках печени в группе A (), тогда как в эти моменты времени в группе B наблюдались застойные явления в центральной вене и синусоидах, а также скопление жировых капель. (Цифры- а).

Микрографические изображения срезов печени в контрольной группе (10 × и 40 ×). Печень показывает нормальную гистологическую архитектуру (Xa и Xb) (H и E). CV = Центральная вена; S = синусоиды; H = гепатоциты.

Микрографические изображения срезов печени бройлеров группы А (10 × и 40 ×). Группа A демонстрирует синусоидальный застой (Ya), расширенную и перегруженную центральную вену (Yb) на 21 и 28 день срезов печени (H и E). CCV = застойная центральная вена; CS = скопление синусоид.

Фотомикрографические наблюдения срезов печени в группе B (10 ×, 40 ×). Группа B показывает расширенную и перегруженную центральную вену (Za) и перегруженные синусоиды (белая стрелка) (Zb) на 21 и 28 день срезов печени (H и E). CCV = Застой в центральной вене; CS = скопление синусоидов; H = гепатоциты.

Микрографические изображения срезов печени в группе B (10 ×, 40 ×). Капли липидов (черная стрелка) были замечены в срезах печени (Zc) на 28 день в группе B (H и E). CV = Центральная вена; LP = липидные капли.

Биохимический анализ

В настоящем исследовании функциональный тест печени проводился путем измерения сывороточного уровня трех различных биохимических параметров, то есть АЛТ, АСТ и ЩФ, в трех экспериментальных группах на 7, 14, 21 и 28 дни. (). Уровень АЛТ был значительно увеличен в сыворотке группы В на 14 день по сравнению с группой А, тогда как уровень АСТ и ЩФ оставался неизменным у бройлеров всех групп.

(a-c) Влияние стероидного стимулятора роста на измерение ферментов печени в сыворотке различных групп бройлеров (Среднее ± SE).Различные буквы в качестве надстрочного индекса указывают на существенные различия между разными группами экспериментов.

ТСХ

ТСХ — это твердо-жидкостная хроматография, которую можно использовать для проверки идентичности вещества. В образцах печени качественная идентификация DEX была проведена с помощью ТСХ (). Положительным контролем была группа, получавшая DEX, то есть Группа B; отрицательные результаты были получены в контрольной группе и в группе А, которая поддерживалась коммерческим рационом для бройлеров, показав положительные результаты по сравнению с группой В.

Качественная идентификация стероидных веществ производилась методом тонкослойной хроматографии.

Обсуждение

В настоящем исследовании бройлерам скармливали высокие дозы DEX для наблюдения за влиянием GC на грубые и морфологические изменения печени и на изменения биохимических параметров в сыворотке.

Масса тела

Масса тела бройлеров в группе, получавшей DEX, была снижена по сравнению с контрольной группой и группой А в том же эксперименте, проведенном нашей группой [12].Согласно литературным данным [18], DEX может повышать уровень Т3 в плазме и стимулировать метаболические пути в мышцах, которые ответственны за мышечную дистрофию. Группа ученых [19] заявила, что хроническое употребление кортикостероидов в рационе может стимулировать катаболизм белков, что может подавить набор массы тела и снизить потребление корма цыплятами-бройлерами.

Общее наблюдение за печенью

Печень контрольной группы имела красноватый цвет, тогда как в печени групп A и B.Точечные геморрагические поражения были обнаружены у бройлеров группы B. Аналогичные результаты были также получены Даттани и Брук [7] и утверждали, что застойные явления могут возникать из-за микронодулярного цирроза печени.

В настоящем исследовании самый низкий вес печени был зарегистрирован в группе B. Однако вес печени увеличивался с увеличением возраста бройлеров, что в соответствии с результатами, представленными в Cai et al . [20]. Сообщалось, что доля печени (в% от массы тела) цыплят с инъекцией DEX увеличивается на 34% по сравнению с контролем и на 39% у цыплят, получавших парное вскармливание.Другие исследования также наблюдали заметное увеличение массы печени при лечении кортикостероном (КОРТ) [21-24]. Вероятно, что увеличение массы печени может быть вызвано усиленным синтезом жирных кислот и центральными жировыми отложениями в ответе печени на высокие уровни циркулирующего CORT [25,26]. Результаты по весу печени, полученные в нашем исследовании, противоречат результатам другого исследования, проведенного группой исследователей [27]. Относительная и фактическая масса печени была значительно выше у кур, получавших DEX.

Гистоморфологические наблюдения

В печени контрольной группы наблюдалась нормальная гистологическая архитектура. Однако в группе A были обнаружены застойные центральные вены и синусоиды. В группе B застой наблюдался в центральной вене и синусоидах печени на 21 и 28 дни экспериментального периода. Накопление липидных капель также наблюдалось на 28 день в группе B. Сходные результаты были получены и другими группами [28–31], утверждающими, что хроническое повышение уровня GC может быть связано с повышенным включением жира в печени.ГК стимулируют глюконеогенез в печени и увеличивают синтез и хранение гликогена в печени [30]. В ответ на повышенный уровень глюкозы в крови может наблюдаться компенсаторное увеличение секреции инсулина. Лечение DEX может вызывать зависящие от времени изменения уровней глюкозы и инсулина и увеличение секреции инсулина, что приводит к отложению большего количества гликогена в цитоплазме гепатоцитов с течением времени. Группа исследователей [32] наблюдала небольшую цитоплазматическую вакуолизацию, идентифицированную как липидные капли, затрагивающую несколько гепатоцитов.Кроме того, наблюдалась широкая вакуолизация цитоплазмы в результате внутриклеточного отека и накопления липидов. DEX подавляет синтез арахидоновой кислоты и простагландина, которые обычно действуют как антиагрегантные агенты [30]. Это, вместе с вероятным возникновением гипертонии и полицитемии в печени, могло вызвать расширение и застой синусоид, которые были замечены в группе, получавшей DEX в настоящем исследовании.

Биохимические параметры

Повышение уровня АЛТ, АСТ и ЩФ в сыворотке и тканях является наиболее частым признаком заболеваний печени [17].В настоящем исследовании уровень АЛТ был значительно увеличен в сыворотке группы В на 14 день эксперимента по сравнению с группой А. Повышенный уровень фермента АЛТ, высвобождаемый в кровь, может быть связан с повреждением печени, учитывая, что АЛТ является специфическим. при гепатоцитарном некрозе [33,34].

В настоящем исследовании сывороточные уровни AST и ALP в группах A и B существенно не отличались от контрольной группы. Было показано, что обработка DEX может повышать уровни ALT и AST в сыворотке крови бройлеров в возрасте 3 недель; однако достоверной разницы в значениях АЛТ и АСТ на 4, 5 и 6 неделях не было [35].Аналогичное сообщение было найдено в другом исследовании [36]. Эти результаты по ALT и AST соответствуют результатам настоящего исследования. В другом исследовании было замечено, что сывороточные уровни ALP, AST и ALT могут быть снижены у крыс с низкими и высокими дозами DEX с перевязкой желчных протоков из-за холестаза или диффузного повреждения печени [37]. Они объяснили, что это изменение может быть связано с холестазом или диффузным поражением печени.

Метод скрининга

Поскольку ТСХ оказалась успешным методом скрининга для оценки остатков кортикостероидов в тканях разных видов [9,38], мы выбрали тот же метод для обнаружения присутствия DEX в наших образцах.Группа B, которая получала домашнюю диету с DEX, показала положительный результат в отношении остатков DEX в печени по наличию пятен на хроматографической пластине. Аналогичное наблюдение было сделано другой исследовательской группой [39], где образцы тканей анализировались путем попадания на пластину ультрафиолетового света. Как и предполагалось, образцы бройлеров контрольной группы и группы А показали отрицательный результат. Настоящее исследование показывает, что DEX может откладываться в печени бройлеров в ответ на экзогенный GC DEX.

Заключение

При общем наблюдении мы наблюдали постоянный вес печени у разных групп бройлеров во время эксперимента, за исключением небольшого снижения в группе B.Наблюдалось только численное уменьшение длины печени группы B, тогда как ширина печени увеличивалась в этой группе. Застойная и геморрагическая печень наблюдалась в группе B. Нормальная морфология печени была обнаружена в контрольной группе, тогда как застойные центральные вены и синусоиды наблюдались в группах A и B. Липидные капли накапливались в срезах печени бройлеров группы B на 28 день. Уровень АЛТ был значительно повышен в сыворотке группы В. Уровень АСТ и ЩФ не изменился у бройлеров различных экспериментальных групп.Метод скрининга выявил присутствие DEX в тканях печени бройлеров, которым вводили DEX. Наконец, было обнаружено, что DEX изменяет рост и морфологию печени, а также концентрацию ALT в кровообращении цыплят-бройлеров. DEX может сбалансировать вес печени за счет увеличения ширины и уменьшения длины печени у бройлеров.

Вклад авторов

Н.С.: руководитель исследования, концептуализировал и разработал исследование, а также подготовил и отредактировал рукопись.МА: Провел эксперимент, сбор и анализ данных, составление рукописи. КР: Помогал в проведении эксперимента и сборе данных. Все авторы прочитали и одобрили окончательную версию рукописи.

Благодарности

Мы также хотели бы поблагодарить доктора Лауру Уэбб, Боннский университет, Германия, за вычитку рукописи. Доктор Насрин Султана получил исследовательский фонд (грант № 2018/337 / BAU) от Исследовательской системы Бангладешского сельскохозяйственного университета, BAU, Бангладеш.

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих интересов.

Примечание издателя

Veterinary World сохраняет нейтралитет в отношении юрисдикционных требований в отношении опубликованной институциональной принадлежности.

Ссылки

цыплят не получают гормоны роста: так к чему все такое смятение?

Природные гормоны, такие как эстроген, прогестерон и тестостерон, необходимы для различных физиологических процессов у людей и животных. На протяжении всей истории эти естественные гормоны проникали в окружающую среду, создавая риск заражения.

Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) определила определенные загрязнители окружающей среды как глобальную проблему.Эти загрязнители способны нанести вред воспроизводству и развитию, изменяя эндокринные функции у людей и диких животных. По мере роста численности населения и увеличения концентрации животноводства количество и концентрация гормонов в местных районах увеличивается.

В результате многие из нас, работающих в птицеводстве, все чаще слышат один и тот же вопрос: «Почему вы добавляете в корм гормоны, чтобы цыплята вырастали такими большими и быстрыми?» Тот факт, что вопрос начинается с «почему» вместо «делать», указывает на уровень замешательства и непонимания потребляющей публики.На самом деле гормоны не используются в птицеводстве более 50 лет. Использование гормонов в птицеводстве было запрещено в США в 1950-х годах.

Почему неразбериха?

Некоторая путаница и недоразумения могут быть связаны с тем фактом, что птицеводство и мясное скотоводство работают по разным правилам.Хотя использование гормона роста запрещено в птицеводстве, это совершенно законная и общепринятая практика в мясном скотоводстве.

Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов (FDA) впервые одобрило гормоны роста для увеличения роста, эффективности кормления и похудания мясного скота в 1956 году. В настоящее время существует пять гормонов (прогестерон, тестостерон, эстроген, зеранол и тренболона ацетат), одобренных для роста. имплантаты для крупного рогатого скота (Archibeque et al., 2007). Тренболона ацетат и зеранол являются синтетическими гормонами, и Служба инспекции безопасности пищевых продуктов Министерства сельского хозяйства США регулярно отслеживает остатки этих продуктов, чтобы гарантировать безопасность поставок говядины.

Прогестерон, тестостерон и эстроген являются естественными гормонами как у людей, так и у животных. Эти гормоны необходимы для нормального развития, роста и размножения. Кроме того, люди могут принимать стероидные гормоны в составе заместительной гормональной терапии и в виде противозачаточных таблеток. Из этих гормонов в настоящее время наибольшее внимание уделяется эстрогену. Эстроген естественным образом встречается как у мужчин, так и у женщин и играет роль в половом развитии, воспроизводстве и поведении (Swyers, 2011).Федеральный регулирующий мониторинг эстрогена, прогестерона и тестостерона невозможен, поскольку невозможно отличить гормоны, используемые для лечения, от гормонов, вырабатываемых организмом естественным путем.

В отличие от домашней птицы (которая не получает дополнительных гормонов роста), большинство мясного скота, выращиваемого в Соединенных Штатах, действительно получают имплантат гормона, стимулирующего рост, обычно, когда они попадают на откормочную площадку. Эти имплантаты обычно вводят мясному скоту в виде гранул, которые хирургическим путем имплантируют под кожу на задней части уха животного.(Ухо используется, потому что уши не попадают в пищу.) В течение периода от 100 до 120 дней имплант медленно растворяется и высвобождает гормон.

Эти имплантаты важны для мясного скотоводства, поскольку животные проводят от 100 до 200 дней на откорме. Признанные преимущества имплантатов включают сокращение количества дней кормления, повышение надоев туш, повышение эффективности процесса кормления крупного рогатого скота и сохранение низких цен на говядину для потребителей. Однако ростовые имплантаты можно использовать только у мясного скота.Стероидные гормоны, одобренные для выращивания домашней птицы, молочного скота, телят или свиней, не одобрены.

Авторы несколько раз упоминали гормональные имплантаты роста, но не обсуждали кормление животных гормонами. Для этого есть причина. Независимо от того, что вы, возможно, читали или что вам сказали, гормоны роста, добавленные в корм для кур, не будут эффективны. Это одна из многих причин, по которым цыплята не получают гормоны, и еще один возможный источник путаницы.

Гормоны существуют в двух различных химических формах: они могут быть стероидами или белками.Стероидные гормоны активны в организме при пероральном приеме. Например, противозачаточные таблетки — это стероидные гормоны, которые можно принимать перорально, и они остаются эффективными даже после прохождения через пищеварительный тракт. Однако белковые гормоны расщепляются в желудке и интенсивно метаболизируются после выхода из кишечника; они теряют способность действовать в организме при проглатывании. Поэтому для воздействия на организм необходимо вводить белковые гормоны. Вот почему большая часть крупного рогатого скота на откормочных площадках получает гормон роста в виде гранул, вводимых под кожу уха, а не в качестве добавки к корму.

Гормоны роста — это белки, похожие на инсулин, который используется для лечения диабета. Людям с диабетом хорошо известно, что не существует пероральной формы инсулина, которую можно было бы принимать, чтобы избежать всех этих инъекций инсулина. Инсулин, принимаемый перорально, расщепляется в пищеварительном тракте, как и любой другой белок, и не будет эффективным. Если бы протеиновые гормоны роста давали цыплятам перорально с кормом, они бы расщеплялись в пищеварительном тракте и становились неэффективными.

Следовательно, как и инсулин для человека, гормоны роста, вводимые цыплятам, должны быть введены путем инъекции, чтобы они были эффективными. И что еще больше усложняет ситуацию, исследования показывают, что для успешного введения цыплятам необходимо будет делать инъекции гормона роста несколько раз в день (Czarick and Fairchild, 2012). Это мероприятие невозможно с точки зрения логистики. Большинство производителей бройлеров содержат по 20 000 и более цыплят в каждом птичнике и во многих птичниках на ферме. Невозможно поймать каждого цыпленка в каждом птичнике несколько раз в день и сделать ему гормональную инъекцию.Кроме того, современные бройлеры были генетически отобраны родительскими племенными предприятиями, чтобы вырасти до своего физиологического предела. Дело в том, что цыплята растут так быстро, как должны, без использования гормонов роста. Кроме того, использование гормонов для слишком быстрого роста цыплят может вызвать проблемы с ногами и даже преждевременную смерть.

Причины быстрого роста

Есть три основные причины быстрого роста, которые мы наблюдаем у современной коммерческой птицы, но ни одна из них не связана с гормонами.

Первое, о чем упоминалось ранее, — это успех первичных племенных компаний в выборе лучших птиц по росту и продуктивности. За последние несколько десятилетий генетикам удавалось примерно на один день в год сокращать время, необходимое для достижения заданного целевого веса. Они извлекли выгоду из короткого интервала между поколениями (продолжительности жизни) цыплят, что позволило им добиться огромных успехов за короткий период времени. Генетическое улучшение в производстве свинины и говядины происходит намного медленнее из-за увеличения интервала между поколениями и времени, необходимого для распознавания генетической изменчивости и улучшения.

Во-вторых, это исследование, связанное с потребностями птицы в питании. Теперь мы точно знаем, чем нам следует кормить различные генетические породы, и птицы содержатся с определенным целевым весом с точки зрения энергии, белка, витаминов и минералов для оптимизации производительности и роста.

В-третьих, мы лучше понимаем, в какой среде обитает птица, чтобы максимально использовать ее генетический и пищевой потенциал. Это включает обеспечение надлежащей температуры, качества воздуха, вентиляции, освещения, а также помещения для кормления и поилки для достижения оптимальной производительности.Правильная среда в сочетании с высококачественным кормом и превосходной генетикой дает птицу, которая не требует гормонов роста и не получает от них никакой пользы.

Уровень осведомленности о гормонах растет

Гормоны — это естественные химические сообщения, которые выделяются в кровоток органами, вырабатывающими гормоны, в телах всех животных, включая человека. Это означает, что люди, куры и другие животные всегда имеют в организме естественные гормоны. В результате стероидные гормоны, вырабатываемые людьми и животными, постоянно выводятся в окружающую среду в своих активных формах.

Среди широкой публики растет интерес и осведомленность об уровнях гормонов в окружающей среде и пище, которую мы едим. Хотя природные стероидные гормоны всегда присутствовали в окружающей среде, они вызывают растущую озабоченность у многих людей. Увеличение численности населения и интенсивное животноводство, необходимое для прокормления населения, могут привести к концентрированному выбросу гормонов.

Сегодня остатки гормонов в мясе часто являются первой проблемой для потребителей в Европе и США (Sundlof, 1994).Отчасти это связано с тем, что синтетические стероидные гормоны, используемые в качестве фармацевтических препаратов, влияют на риск рака. Например, синтетический эстроген, используемый в 1960-х годах, диэтилстильбестрол, был изъят из употребления после того, как было обнаружено, что он увеличивает риск рака влагалища у дочерей лечившихся женщин (Gandhi and Snedeker, 2000).

Дополнительная путаница в отношении гормонов проистекает из того факта, что в течение многих лет люди не осознавали, что стероидные гормоны могут быть получены из растений. Они думали, что это воздействие происходило только из пищи животного происхождения.Однако многие растения, важные для питания человека, содержат фитоэстрогены. Фитоэстрогены — это эстрогенные соединения, содержащиеся в растениях, включая фрукты, овощи, бобы, горох и злаки (Swyers, 2011). А некоторые продукты содержат гормонально активные вещества в концентрациях, превышающих их содержание в мясе.

Фактически, Hartmann et al. 1998) сообщил, что мясо не играет доминирующей роли в ежедневном потреблении стероидных гормонов. Эти исследователи указали, что основным источником эстрогенов и прогестерона являются молочные продукты (60–80 процентов).Вклад в поставку гормонов яиц и овощных продуктов был на том же уровне, что и мясо, мясные продукты и рыба. Однако Handa et al. (2010) пришли к выводу, что потребление эстрогена в результате ежедневного потребления мяса нельзя игнорировать как фактор, определяющий здоровье человека.

Среди диетических факторов риска Ganmaa и Sato (2005) сообщили, что их больше всего беспокоило молоко и молочные продукты, потому что сегодня молоко производится от беременных коров, у которых уровни эстрогена и прогестерона заметно повышены.Напротив, Parodi (2012) сообщил, что при приеме внутрь только от двух до пяти процентов биоактивной формы эстрогена выживает при метаболизме в слизистой оболочке кишечника и при первом прохождении через печень. Hartmann et al. (1998) указали, что эффект первого прохождения через печень инактивирует около 90 процентов проглоченных гормонов. Хотя гормональные риски продолжают обсуждаться и исследоваться по нескольким направлениям, окончательные ответы в настоящее время получить трудно, а противоречивые отчеты продолжают вносить путаницу среди потребителей.

Понимание проблемы затрудняется тем фактом, что естественное производство стероидов людьми намного превышает суточное потребление гормонов растительной или животной пищей. В таблице 1 приведена суточная выработка естественных гормонов человека в зависимости от их количества в противозачаточных таблетках и некоторых других продуктах питания. Продукция эстрогена указывается в нанограммах. Нанограмм равен одной миллиардной грамма (0,000000001), что сопоставимо с одной травинкой на футбольном поле (NCBA, 2007). Дети производят примерно в 20 раз больше прогестерона и примерно в 1000 раз больше тестостерона и эстрогенов, чем они потребляют с пищей в среднем за день; а у детей самый низкий уровень продукции стероидов среди всех людей (Hartmann et al., 1998).

Данные по гормонам у кур ограничены, потому что цыплята не получают добавки с гормоном роста. Поэтому, в отличие от мясного скотоводства, у цыплят не существует синтетических гормонов, которые можно было бы проверить. Однако, как упоминалось ранее, у кур и всех других животных есть естественные уровни эстрогена, прогестерона и тестостерона. Handa et al. (2010) сообщили об уровнях эстрогена в образцах куриного жира в США и Японии (Таблица 1). Данные для куриного жира были представлены потому, что уровни эстрогена в жире были выше, чем в мясе (Handa et al., 2010).

Таблица 1. Ежедневная выработка эндогенного (естественного) эстрогена по отношению к количеству в противозачаточных таблетках и некоторых других продуктах питания
Источники включают Anonymous, 2010; Аноним, 2011; Handa et al., 2010; NCBA, 2007; Swyers, 2011. Полный список цитат см. В разделе «Ссылки».

Есть основания для беспокойства относительно воздействия гормонов, попадающих в окружающую среду или выбрасываемых в окружающую среду. По мере роста населения и увеличения животноводства для удовлетворения растущего спроса на продовольствие защита окружающей среды становится еще более важной.Кроме того, следует продолжить исследования суточного потребления гормонов как растительного, так и животного происхождения, чтобы отслеживать их влияние на здоровье и благополучие человека. Однако очень важно помнить, что ежедневно люди вырабатывают гораздо больше гормонов, чем потребляют с пищей.

Разоблачение мифов

И люди, и животные выделяют гормоны, которые могут попасть в окружающую среду. Усердие в программах управления питательными веществами для сельскохозяйственных предприятий является необходимостью, и мы должны продолжать внимательно следить за их воздействием на окружающую среду.Кроме того, птицеводство должно лучше предоставлять потребителям фактическую информацию, чтобы бороться с путаницей, мифами и неточной информацией, которая стала настолько распространенной в отношении использования гормонов и производства кур. Правда в том, что в птицеводстве гормоны не используются. И хотя правда говорит сама за себя, птицеводство должно громко заявить о себе, если мы ожидаем, что сообщение будет услышано.

Список литературы

Archibeque, S.L., T. Borch, T.E. Энгл, Дж. Дж. Вагнер и Х.Хан. 2007. Остатки эндокринных разрушителей на откормочных площадках и в отходах молочного животноводства. В: Proc. 68-й Миннесотский Nutr. Конф. 94-108.

Аноним. 2010. Противозачаточные таблетки, пластырь или кольцо. По состоянию на 4 января 2013 г.

Аноним. 2011. Факты о стимуляторах роста. По состоянию на 4 января 2013 г.

Czarick, M. and B. Fairchild. 2012. Семь причин, по которым цыплят НЕ кормят гормонами. Советы по содержанию птицы 24 (4): 1-4.

Ганди Р. и С.М. Снедекер. 2000. Беспокойство потребителей по поводу гормонов в пище.Информационный бюллетень № 37. Кооперативное расширение Корнелла. Программа Корнельского университета по раку груди и факторам риска окружающей среды в штате Нью-Йорк.

Ганмаа, Д. и А. Сато. 2005. Возможная роль женских половых гормонов в молоке от беременных коров в развитии рака груди, яичников и тела матки. Med. Гипотезы 65 (6): 1028-37.

Ханда, Ю., Х. Фудзита, Ю. Ватанабэ, С. Хонма, М. Канеучи, Х. Минаками и Р. Киши. 2010. Связано ли потребление эстрогена с пищей из мяса с заболеваемостью гормонозависимым раком? Дж.Clin. Онколо. 28:15 с. 2010 (доп .; абстракция 1553).

Хартманн, С., М. Лакорн и Х. Стейнхарт. 1998. Естественное присутствие стероидных гормонов в пище. Food Chem. 62 (1): 7-20.

NCBA. Национальная ассоциация животноводов по говядине. 2007. Информационный бюллетень: Использование стимуляторов роста в животноводстве. По состоянию на 4 января 2013 г.

Parodi, P.W. 2012. Влияние эстрогена коровьего молока на риск рака. Int. Молочный J. 22 (1): 3-14.

Sundlof, S.F. 1994. Риски для здоровья человека, связанные с остатками лекарств в продуктах животного происхождения.Ж. Агромедицина 1: 5-20.

Свиерс, К. 2011. Фитоэстрогены. Лист сведений. Кормление на ранчо. Форт-Коллинз, Колорадо

апрель 2013

гормонов, стероидов и антибиотиков у цыплят — Lenard’s

Гормоны и стероиды

В Австралии одна из самых эффективных отраслей по производству и переработке куриного мяса в мире, но до сих пор существует множество неправильных представлений о том, что привело к появлению более крупной и толстой курицы, чем 20 лет назад.В Австралии гормоны или стероиды не кормят и не вводят домашним птицам. В Lenard’s курицу поставляют только австралийские компании, продающие 100% австралийскую птицу.

В соответствии с нормативными актами, гормоны или стероиды не назначаются цыплятам ни при каких обстоятельствах. Вопреки городской легенде, введение гормонов цыплятам как в Австралии, так и во всем мире было незаконным более 40 лет. Государственное обследование остатков мяса регулярно проверяет, чтобы подтвердить, что гормоны не используются.Реклама, которая заявляет, что «не добавлены гормоны», не дифференцирует свой продукт, а вместо этого устанавливает общеотраслевые правила.

Антибиотики

Куриное мясо, произведенное в Австралии, является полезным и питательным, и его употребление в пищу не подвергает потребителей воздействию остатков антибиотиков или бактерий, устойчивых к антибиотикам, используемым в медицине. Это потому, что, во-первых, антибиотики используются таким образом, чтобы в мясе не было остатков. Периоды хранения, предназначенные для обеспечения того, чтобы в мясе не осталось остатков во время обработки, всегда соблюдаются.

Во-вторых, антибиотики используются осмотрительно, чтобы свести к минимуму развитие резистентности. Следует также отметить, что любые бактерии, которые могут находиться на сыром мясе, независимо от того, устойчивы они к антибиотикам или нет, погибают в результате обычного приготовления. Австралийская федерация куриного мяса поддерживает использование антибиотиков у цыплят двумя важными способами. 1. Лечебные средства — используются для лечения бактериальной инфекции. 2. Профилактические средства — используются для профилактики заболеваний у здоровых животных.

Использование антибиотиков обычно происходит только после того, как другие стратегии лечения оказались безуспешными.Птица осматривается ветеринарами до и после введения антибиотиков, и до обработки цыплят, которым вводили антибиотики, применяется период приостановки. Используются только антибиотики, одобренные для использования в животноводстве Национальным советом по здравоохранению и медицинским исследованиям и Национальным органом регистрации.

Линия информации для потребителей Федерации куриного мяса

Информационная линия для потребителей Федерации куриного мяса — Chook Infoline — была создана в 2006 году, чтобы помочь ответить на вопросы потребителей о курином мясе и индустрии куриного мяса в Австралии.Chook Infoline стремится развеять некоторые мифы и заблуждения о том, как выращивают цыплят в Австралии, — ответы на них предоставляются удобным и современным способом.

Это соответствует стремлению отрасли быть полностью открытым в отношении своей практики, поскольку она использует «лучшие мировые практики» выращивания, выращивания и переработки цыплят. 1300 4 CHOOKs (1300 424 665) доступны с 9:00 до 17:00 по восточному стандартному времени, и на него отвечают специально обученные операторы. Звонящим также может быть предоставлена ​​отраслевая политика по таким важным вопросам, как антибиотики или генетически модифицированные корма.Их также можно направить на отраслевой веб-сайт для получения дополнительной информации по адресу www.chicken.org.au

Почему фермеры вводят гормоны в говядину, но не в курицу

Это довольно распространено, но совершенно не нужно. Почему? Потому что вся птица, продаваемая в США, не должна содержать гормонов.»Это закон.

Но почему фермеры не настаивают на изменении закона и использовании гормонов в птицеводстве? Оказывается, это просто не практично .

На сегодняшний день FDA одобрило использование стероидных гормонов только у овец и коров, выращиваемых для производства говядины.

Согласно действующим нормам, стероидные гормоны не разрешены к применению у дойных коров, телят, свиней или домашней птицы.(Однако существует одобренное использование нестероидного гормона бычьего соматотропина у дойных коров для увеличения их надоев.)

Фермеры и крупные мясные компании могут накачивать свой скот такими стимулирующими рост лекарствами, которые могут включать натуральные и синтетические версии эстрогена, прогестерона и тестостерона — для увеличения веса. Эти препараты помогают животному преобразовывать корм в мышцы, жир и другие ткани более эффективно, чем это было бы естественно.

Но когда дело доходит до курицы, фермерам просто не нужны эти дополнительные гормоны, сказал Tech Insider Том Супер, представитель Национального совета по курице.

«Благодаря генетике, разведению, питанию, ветеринарии и улучшениям в содержании цыплят стали здоровее и крупнее, чем когда-либо прежде», — сказал Супер.

Короче говоря, нам не нужно откармливать цыплят так, как откармливают коров.

Использование гормонов у кур также нецелесообразно, сказал Супер. «Фермеры должны будут вводить каждую птицу вручную примерно три раза в день», — продолжил он. Если учесть, что на типичной ферме может быть от двух до четырех сараев, в каждом из которых содержится около 25 000 кур.Это было бы чертовски много уколов.

В научном сообществе ведутся споры о том, могут ли эти добавленные лекарства в мясе, выращиваемом для употребления в пищу, нанести вред здоровью людей, поэтому приятно осознавать, что вы никогда не будете застигнуты врасплох с упаковкой курицы, содержащей спрятанное мясо. гормоны.

Однако цыплят можно накачивать другими веществами и лекарствами, такими как антибиотики, которые действительно имеют серьезные последствия.

Чрезмерное использование антибиотиков в мясе вызвало серьезную эпидемию супербактерий, некоторые из которых становятся все более и более устойчивыми к нашим самым сильным лекарствам. Куры, выращиваемые на заводских фермах, также могут быть переполнены, что может вызвать значительный стресс и оказать реальное влияние на здоровье и качество мяса.

Так что, хотя вы можете спокойно игнорировать этикетку «без гормонов» на курице, вы можете обратить внимание на некоторые другие, например, с антибиотиками.И пока вы это делаете, не обращайте внимания на этикетку «натуральный» на курице. Это почти бессмысленно.

Влияние кортикостероидов на субпопуляции лимфоцитов и секрецию лимфокинов у кур по JSTOR

Различные эффекты глюкокортикостероидов на иммунную систему птиц были исследованы на цыплятах, получавших внутримышечно от 0,1 до 2,5 мг дексаметазона или преднизолона. Кинетические изменения в приросте массы тела, процентном содержании субпопуляций лимфоцитов и функциях Т-клеток исследовали после лечения дексаметазоном или преднизолоном через день.Цыплята, получавшие дексаметазон или преднизолон, показали снижение прироста массы тела по сравнению с необработанными цыплятами того же возраста. В целом, общее количество лимфоцитов селезенки цыплят, обработанных двумя препаратами, было значительно ниже, чем в контроле дозозависимым образом. Проточно-цитометрический анализ субпопуляций лимфоцитов селезенки показал, что процентное содержание лимфоцитов, экспрессирующих CD8, γδ Т-клеточный рецептор, Ia или IgM-антигены и естественные клетки-киллеры, было ниже у обработанных дексаметазоном цыплят, чем в контроле, тогда как процентное соотношение Т-лимфоцитов, несущих Антигены CD3, CD4 или αβ TCR были выше.Кроме того, Т-клетки селезенки, полученные от цыплят, получавших дексаметазон, показали значительное снижение индуцированной конканавалином А лимфопролиферации и продукции интерлейкина 2 и гамма-интерферона. Результаты характеризуют различные иммуносупрессивные эффекты глюкокортикоидов на иммунную систему птиц. /// Se estudiaron varios efectos de los glucocorticosteroides sobre el sistema inmune aviar, en aves que fueron inyectadas внутримышечно с 0,1 и 2,5 мг дексаметасона или преднизолона.Después del tratamiento con dexametasona o prednisolona, ​​se excinaron los cambios cinéticos en la ganancia de peso corporal, el porcentaje de la subpoblación de linfocitos y la funcionalidad de las células t. , atrofia del bazo y disminución en la ganancia de peso compareos con los pollos no tratados de la misma edad. В целом, la población de linfocitos esplénicos de los pollos en los dos tratamientos fue Mongantemente más baja que en los pollos no sometidos a tratamiento y fue independent de la dosis.Аналитический анализ флуоресценции флуоресцентных субпоблосионов, вызывающих линфоситос, демостро, лос-линфоцитоз, экспрессирующий лейкоциты CD8, и рецептор Лас-целулас Т, и антигенос Ia или IgM, и лас-целулас, а также менструальные потоки. en los controles, en los que el porcentaje de linfocitos T que mostraban los marcadores CD3, CD4 o los antígenos TCR fue más alto. Además, las células esplénicas T obtenidas de aves tratadas con dexametasona, mostraron una depresión important en la linfoproliferación inducida con concanavalina A y en la producción de interleucina 2 e interferón gama.Los resultados muestran una variedad de efectos inmunosupresores de los glucocorticoides en el sistema inmune aviar.

Avian Diseases — международный рецензируемый журнал, публикует оригинальные фундаментальные или клинические исследования высочайшего качества из различных дисциплины, в том числе: микробиология, иммунология и патология. Научный статьи по болезням домашней птицы, домашних птиц и диких птиц, включая этиологию, патогенез, диагностика, лечение, контроль, безопасность пищевых продуктов, устойчивость к антибиотикам и эпидемиология принимаются.Миссия журнала — расширение научных знаний. и способствовать здоровью птиц. Предполагаемая читательская аудитория: студенты-птицы, преподаватели, практики, исследователи, диагносты, энтузиасты и специалисты по домашним животным и диким птицам, национальные и международные колледжи ветеринарных и медицинских наук, ветеринарные врачи, ветеринары и специалисты, занимающиеся здоровьем птицы и птичьими болезнями, птичьи диагностические лаборатории, ученые по безопасности пищевых продуктов, отделы общественного здравоохранения, эпидемиологи и лаборатории по борьбе с болезнями.

Американская ассоциация патологов птиц (AAAP) является некоммерческой организацией 501 (c) (3) организация, которая связана с Американской ветеринарной медицинской ассоциацией. Мы — профессиональная организация для всех ветеринаров-птицеводов Севера. Америка со многими членами из Центральной и Южной Америки. Основная миссия AAAP предоставляет возможности повышения квалификации ветеринаров-птицеводов.