Стероиды для бройлеров: Гормоны в птицеводстве

Содержание

Гормоны в птицеводстве

Для успешного решения задач по дальнейшему увеличению продуктивности птицы и получению 280—300 яиц от каждой несушки в год в птицеводстве применяются антибиотики, витамины, бактериальные и тканевые препараты, микроэлементы, синтетические ростовые вещества, транквилизаторы и в том числе такие биологически активные вещества, как гормональные препараты.

Возможности продуктивности птицы в оптимальных условиях кормления и содержания проявляются еще далеко не полностью. У кур в яичнике насчитывается свыше 3600 яйцеклеток, из которых при максимальной яйцеклетке в течение всей жизни созревает около 1500 яиц. Следовательно, птица обладает потенциальной способностью дать значительно больше продукции, чем мы получаем. Более полное использование физиологических резервов продуктивности птицы в условиях промышленной технологии во многом зависит от правильной организации селекционно-племенной работы, полноценного сбалансированного кормления и рационального использования биологических и химических препаратов.

Гормональные препараты и их аналоги в настоящее время в птицеводстве не получили широкого распространения. Применяются лишь немногие из них в основном для сокращения сроков роста и созревания молодняка, а также стимуляции процессов яйцеобразования. С помощью гормональных препаратов повышается продуктивность птицы путем устранения таких неблагоприятных факторов как инстинкт насиживания, клохтание, линька, которые затормаживают яйцекладку.

На эффективность использования гормональных стимуляторов в птицеводстве оказывают влияние многие факторы, в частности физиологическое состояние организма, вид, пол и возраст птицы, сбалансированность кормления, вид, доза и кратность введения препаратов и др. Введение стимулирующих препаратов в период интенсивной яйценоскости менее эффективно, чем до или в начале этого периода. В 2-месячном возрасте препараты оказывают больший эффект на рост и развитие птицы, чем в 3—4-месячном. У петушков живая масса увеличивается в 1,5—2 раза быстрее, чем у курочек.

Имеет значение и породный фактор. Наибольшее увеличение привеса биостимуляторы вызывают у цыплят пород плимутрок, леггорн, род-айланд. У мясных пород увеличение привесов под влиянием стимуляторов незначительное.

Из гормональных препаратов, применяемых в птицеводстве, следует назвать некоторые гормоны женских половых желез и их аналоги (эстрадиола дипропионат, прогестерон и др.), гормоны гипофиза (оцитоцин), тиреоидные препараты и другие вещества.

Эстрадиола дипропионат — синтетический эстрогенный препарат. Представляет собой белый кристаллический порошок, хорошо растворимый в растительных маслах и спирте. Выпускается в ампулах по 1 мл в виде 0,1%-ного масляного раствора. Препарат обладает высокой активностью, замедленным и продолжительным действием. В дозах 2—30 ЕД/г живой массы ускоряет интенсивность роста молодняка птицы, особенно в первые 20—30 дней после введения. В результате применения эстрадиола дипропионата у кур увеличивается количество созревающих фолликулов в яичниках на 18,1—49,5%, значительно сокращаются сроки полового развития кур-молодок, число несушек возрастает на 50—80%.

Методом биологического контроля установлено, что в течение 40 дней с момента введения этот препарат полностью выводится из организма и не обнаруживается в мясе и органах птиц.

Прогестерон — синтетический препарат гормона желтого тела. Это белый кристаллический порошок, растворимый в маслах, спирте, эфире. Выпускается в ампулах по 1 мл в виде 0,5—1—2,5%-ного масляного раствора.

При внутримышечном введении в дозе 30 мг на голову у кур вызывает принудительную линьку, которая, как известно, в птицеводстве приобретает практическое значение. В дозе 5 мг/кг живой массы прогестерон прерывает инстинкт насиживания. У индеек при 2—3-разовом подкожном введении через день в дозе 0,03 г на голову приостанавливает клохтание. В литературе имеются сведения о том, что прогестерон изменяет проницаемость клеточных мембран белковой части яйцевода, способствуя инфильтрации белков из сыворотки крови. Это положительно сказывается на увеличении количества белка и массы яиц.

По данным А. Хеннига, у сельскохозяйственной птицы (куры, утки, индейки) применение гестагенных препаратов, в частности 8—16 г хлормадинонацетата на тонну корма, подавляет раннюю яйцекладку, когда яйца еще не пригодны для инкубации.

Для стимуляции роста цыплят возможно применение анаболического стероида дианабола. При инъекции 0,2 мг/кг живой массы этого препарата среднесуточный привес цыплят увеличивается на 19%.

Овоген — комбинированный препарат, состоящий из прогестерона, витаминов и антибиотиков. Различают овоген-1 и овоген-2 (Болгария).

Овоген-1 содержит 0,05 г прогестерона, 0,05 витамина А, 0,05 витамина D3, 0,015 витамина Е, 1 г окситетрациклина хлористоводородного в виде суспензии в 45 мл подсолнечного масла и раствор витамина В12 (300 мкг в отдельной ампуле на 5 мл). Перед употреблением содержимое обеих ампул смешивают. Полученную смесь в виде эмульсии вводят внутримышечно в дозе 1 мл/кг живой массы. Овоген-1 используют для подавления инстинкта насиживания у кур, для борьбы с расклевом, а также для стимуляции яйценоскости.

Овоген-2 содержит 0,03 г прогестерона, 0,18 витамина А, 0,0175 витамина D3, 0,03 витамина Е, 2,25 г окситетрациклина хлористоводородного в виде суспензии в 80 мл подсолнечного масла и раствор витамина В12 (60 мкг в отдельной ампуле на К) мл). После смешивания содержимого ампул препарат вводят внутримышечно в дозе 1 мл/кг живой массы птицы. Овоген-2 стимулирует яйценоскость, предупреждает расклев у птиц. Профилактическая обработка овогеном-2 весной и летом сокращает сроки линьки. Под воздействием овогена-1 и овогена-2 стимулируется функции яичников и на 10—15% увеличивается продуктивность птицы. При этом возрастает количество белка и средняя масса яиц, увеличивается содержание каротина в желтке, повышается прочность скорлупы.

Применять овоген-1 и овоген-2 рекомендуют путем однократной подкожной инъекции курам в возрасте 7—10 мес. В случае необходимости через 2,5—3 мес обработку птиц повторяют.

Сыворотка крови жеребых кобыл — препарат, получаемый из крови жеребых кобыл. Выпускают СЖК в ампулах или флаконах. В СЖК содержатся фолликулостимулирующий гормон (ФСГ), регулирующий рост и развитие фолликулов яичника, лютеинизирующий гормон (ЛГ), стимулирующий созревание фолликулов и овуляцию. В практике птицеводства СЖК можно использовать для гормональной стимуляции роста молодняка птиц и яйцекладки кур-несушек. Однократная внутримышечная инъекции 2 мл (160 ME) СЖК на голову повышает яйценоскость кур несушек на 5—10%, а кур-молодок — на 10—24%. СЖК применяют также для подавления инстинкта насиживания у птиц. Однократная подкожная инъекция 360 ME СЖК на голову тормозит проявление инстинкта насиживания у 92,5% гусынь, а повторная обработка (через 5—7 дней) — еще у 5,6%. Яйцекладка у птиц после обработки возобновляется через 10—13 дней. В результате применения СЖК у гусынь не только прекращается проявление инстинкта насиживания и возобновляется яйцекладка, но и значительно уменьшаются потери живой массы.

Оцитоцин — синтетический препарат, сходный по физиологическому действию с естественным гормоном нейрогипофиза — оцитоцином. В. 1 мл оцитоцина содержится 5 ME. В практике птицеводства оцитоцин применяют при задержке яйцекладки (не более 4 дней). Вводят курам внутримышечно 2 ME препарата на голову.

Питуитрин — экстракт нейрогипофизов, взятых от крупного рогатого скота. Препарат содержит гормоны оцитоцин и вазопрессин. Выпускается в ампулах по 1 мл и в виде порошка сероватого цвета. В 1 мг сухого препарата содержится 1 ME. В птицеводстве питуитрин используют как эффективное средство при затрудненной яйцекладке. Вводят препарат внутримышечно один раз, курам — 0,5—0,7 мл, уткам и гусыням — 1—1,5 мл.

Из тиреоидных препаратов для птицеводства представляет интерес протамон — йодированный казеин, содержащий 3,3—3,7% тироксина. Внесение этого препарата в рацион птиц в дозе 22 г на 100 кг корма обеспечивает высокую яичную продуктивность. После добавления 0,01—0,02% протамона к корму у цыплят лучше развивается оперение. В дозе 0,04% в рационе протамон усиливает рост слабых цыплят.

Заслуживают внимания и другие йодсодержащие препараты, применение которых связано, главным образом, с влиянием на функцию щитовидной железы.

Йод входит в состав гормона тироксина, регулирующего обмен веществ, функции размножения, развитие оперения птиц. Добавка йода (чаще в виде йодистого калия) в рацион птиц повышает их яйценоскость, привес, выводимость яиц. Особенно хорошие результаты получают при подкормке птиц йодом в зонах с недостатком йода в почве, воде, растениях.

По данным Ф. М. Зейналова, для улучшения инкубационных качеств яиц кур породы нью-гемпшир и леггорн голландского происхождения эффективна добавка к рациону 0,04 мг йода на 1 кг живой массы в сутки. 0,15 мг% йодистого калия, введенного в рацион цыплят, способствует увеличению их живой массы к 3-месячному возрасту на 10,9%.

Добавка в рацион курам-несушкам йодистого калия из расчета 3 мг на 1 кг живой массы позволяет значительно увеличить производство яиц — на 4 яйца в месяц на курицу-несушку и на 6% сократить выбраковку слабой птицы. При этом мясо получается более качественным. Количество белков в нем увеличивается на 1,7%. Оптимальной дозой йода для кур считается 0,2—0,3 мг/кг сухого вещества рациона.

Растущим цыплятам (1—70 дней) на 1 кг корма следует добавить 0,15 мг йода (или 0,2 мг йодистого калия).

Кроме йодированного казеина и йодистого калия, в практике птицеводства используют йодированную поваренную соль, содержащую не менее 0,0007% йода.

По данным С. В. Редих и Н. И. Булавко, стимулирующее действие йодистых препаратов на рост цыплят в значительной степени зависит от того, в какой форме йод поступает в организм (J+ или J). Наиболее благоприятный эффект они наблюдали при даче хлористого йода, где йод имеет положительный заряд. Цыплята в возрасте 1—63 дня, получавшие хлористый йод, эффективнее использовали энергию корма. Расход его на 1 кг привеса был на 15,7—20% ниже, чем в контроле. Привес каждого цыпленка увеличился на 120—140 г. Экспериментальные данные показали, что хлористый йод обладает значительным ростстимулирующим эффектом, что дает возможность рекомендовать этот препарат для практического применения при выращивании бройлеров. Неплохие результаты получены также при даче с кормом йодинола (0,25%-ный раствор препарата из расчета 0,1 мл/кг живой массы).

Живая масса цыплят при этом увеличилась на 15,6—16,5%.

В литературе приводятся данные физиологических опытов о положительном влиянии на рост, азотистый и углеводный обмен у цыплят инсулина и толбутамида.

Еженедельная инъекция 2 ЕД/кг живой массы протаминцинк-инсулина цыплятам-бройлерам или скармливание 0,004—0,012% от массы комбикорма толбутамида уменьшают концентрацию сахара в плазме крови и увеличивают содержание гликогена в печени. Однако применение этих препаратов в птицеводстве требует дополнительных исследований.

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.

домашняя курица: почему так дорого?!

Домашняя птица дороже, потому что условия ее содержания и кормления совсем другие, чем у «магазинной». Давайте сравним, как живут цыплята на фермах наших фермеров-поставщиков и на птицефабрике

Большинство цыплят, и на птицефабриках, и на фермах — это бройлеры, кроссы мясных пород, выведенные специально на мясо. Бройлер хорошо кушает, быстро растет, получается кругленьким и симпатичным. Очень нравится покупателям. Так что разбираться будем на примере именно бройлеров. 

Содержание цыплят 

На птицефабрике 

Цыплята на птицефабрике содержатся либо в ярусных клетках, либо на полу, в глубокой подстилке. Норматив — 400 см2 на птицу. Это квадрат 20 на 20 см. Меньше листа А4. Размер цыпленка в магазине представляете? Плечом к полечу, без возможности сделать шаг или расправить крылья. С ярусными клетками все еще печальнее. Норматив — 30 голов на 1м3. 

В таких условиях птица находится в состоянии постоянного стресса и начинает вести себя неадекватно. Драки, каннибализм, выщипывание перьев — все это для любой птицефабрики серьезная проблема. Чтобы обезопасить цыплят и уменьшить падеж, часто применяется дебикирование — обрезка и прижигание клюва, в 6-10 суточном возрасте. 

На ферме 

Если честно, бывает по-разному. Частники часто любят поставить в сараюшке печку, клетки в три этажа, и напихать в них цыплят. Но у нас на «Зелёном Хуторе» таких поставщиков нет — мы категорически против клеточного содержания птицы. 

Одно из ключевых требований, которые мы проверяем во время инспектирования ферм — содержание бройлеров должно быть по крайней мере напольным. И не больше 15 цыплят на 1м2, это в среднем квадрат 35*35 см на птичку. Бройлеры вообще не спортсмены, так что такая плотность для них вполне окей. Примерно как для небольшой семьи в «хрущовке» — тесновато, но жить можно. 

Кормление 

На птицефабрике 

У каждой птицефабрики есть свой комбикормовый завод, который производит корма «для внутреннего употребления». Что там в составе, доподлинно неизвестно. Скорее всего, зерновая смесь, витаминные и минеральные добавки. 

Применение стероидных препаратов, гормонов, в РФ запрещено, но есть большое количество нестероидных препаратов, которые ускоряют рост и набор массы у птицы — их добавляют и в корм, и в воду. Благодаря этим добавкам цыплята едят меньше, а растут быстрее. 

На ферме 

За всех частников не скажем, видели всякое. Но наши поставщики цыплят дают бройлерам обычный комбикорм (смесь ячменя, овса, кукурузы плюс витамины) и докармливают зерном, травой, рублеными яйцами, отварной картошкой и творогом. Особенно стараются дать кукурузы побольше, на ней цыпленок становится таким приятно-желтоватым. А Нато Елисеева обходится и вовсе без комбикорма. Своих цыплят она кормит зерном, овощами, хлебом и творогом.

Лекарственные препараты 

На птицефабрике 

При такой скученности любая инфекция (а бройлеры вообще им подвержены) — катастрофа. Поэтому антибиотики сопровождают фабричного цыпленка с первого дня жизни. Они распыляются в воздухе, добавляются в воду. А как иначе? Тем более, что многие антибиотики имеют свойство дополнительно стимулировать набор мышечной массы. Очень удачный препарат — падеж птицы меньше, а привес больше. А значит, разведение птицы становится еще выгоднее. 

Строго говоря, перед забоем цыплята должны выдерживаться без антибиотиков 5 суток, по инструкции. Считается, за это время антибиотики выведутся из организма птички. Однако производители торопятся — ведь кормить цыплят несколько суток, когда привеса они уже не дают, весьма разорительно. В результате, независимые экспертизы стабильно показывают наличие антибиотиков в курином мясе. 

На ферме 

В первые две недели жизни бройлеры пару раз получают бисептол или энрофлоксацин. Иначе эти очень нежные цыплята имеют слишком большой шанс погибнуть от простуды или поноса. После этого возраста — только по медицинским показаниям, если птичка приболеет. Для наших поставщиков вырастить цыплят экологичных, без «химии», это дело чести и репутации. 

И что в результате? 

Бройлер на птицефабрике набирает вес в 1,5-1,7 кг на 29-32 сутки. За это время он съедает около 2,5 кг корма. А бройлер у наших фермеров набирает вес в 1,5-1,7 кг на 40-42 сутки. За это время он съедает около 3,5 кг корма. 

Бройлеру на ферме нужно минимум вдвое больше места (а обычно в три-четрые раза), чем на птицефабрике. 

Риск гибели цыплят без применения антибиотиков выше на ферме, чем на птицефабрике. 

Из этих факторов и складывается более высокая цена. Что такое дорого, за что есть смысл платить — каждый решает для себя. Но если вдуматься, разница в цене между «фабричным» цыпленком и домашним примерно равна чашке кофе с маленьким пирожным. Зато какое различие в пользе!


Чем объективно домашние цыплята отличаются от магазинных:

— Многочисленные исследования доказывают, что мясо цыплят натурального содержания заметно богаче витаминами и микроэлементами. 

— ВОЗ (Всемирная Организация Здравоохранения) настоятельно рекомендует для питания детей, пожилых людей и всех, находящихся в группах риска по здоровью, именно мясо животных натурального, а не промышленного откорма.  

— Врачи предупреждают, что для человека употребление продуктов, в которых содержатся антибиотики, опасно выработкой резистентности (привыкания) к тем или иным препаратам. Существует также риск аллергических реакций и возникновения дисбактериоза. 

— Наши покупатели постоянно отмечают, что домашняя курочка — она и на вкус совершенно другая, чем «магазинная», и даже пахнет иначе. 

Грёбанные ножки и куринные мозги


Нет, речь будет о женских ножках, которые могут свести с ума. Хотя, чего таить — тема тоже больная. Как-то посвящу пост 🙂

Так уж получилось, что по долгу службы пришлось мне говорить с одним специалистом-аграрием. Словам его не доверять у меня нет оснований, так как человек владеет крупной агропромышленной корпорацией; пустословить (если вопрос не касается профита) ему нет смысла.

Своего времени все мы активно кушали «ножки Буша». Не знаю, слали их нам непосредственно с секретариата президента янки, или с каких-то недобитых буржуазых ферм сытой старушки-Европы, но в 90-е пробовали это лакомство многие. Уже позже, когда куриные ножки приелись до блевоты, вышли на рынок «Наши рябы» и прочая куриная продукция, которая не менее активно толкает бедрышка бройлеров трудовому народу.

В чём же секрет массовости и стойкости этого куриного продукта и почему в 90-е у нас было куча ножек, но практически не было грудок? Начнём с физиологии бройлера. Сама по себе огромная жирная курица должна сидеть в клетке и жрать в течении 42 дней. После чего — чик — и курица на вашем столе. Если кормить бройлера чистым комбикормом (злаки+соя+маис+рыбная мука с витаминками) — тварюка растет здоровой и вполне себе вкусной. Если же птаху кормить говном всяким (чем сейчас большинство фермеров и кормит) с содержанием гормонов и стероидов — бройлер приходит в форму быстрее. Цикл сокращается и недобросовестный буржуй получает профита больше. По другой схеме также можно — держать бройлера 50 дней, набив дополнительный вес. Вся дрянь — в виде продуктов распада аминокислот, стероидов, тяжёлых металлов оседает в мышцах курицы. На ферме куры (кроме несучек) ходят, то есть наращивают мышечную массу именно на ножках. В них же уходит и всё то дерьмо, которым курицу кормят.

Казалось бы — чего там! — сожрём за милу душу! Но тот же бройлер — живое (или уже дохлое) доказательство вреда. Водянистая кожа, ткани со слабым тонким мышечным волокном, облезлая шея и уродское формирование тела.

И вот они — 1990-е! Жрать многим украинцам нечего. Но есть деликатес  завезенный братскими европейскими народами на прокорм славянскому брату — «ножки Буша». Заметьте, грудка, в которой токсины почти не скапливаются, на наш рынок вышла куда позже…


Курица

Давайте разберемся, зачем покупать петуха и какого цвета должна быть курица.

🐓 Самые распространенные курицы на наших прилавках — это бройлеры-самки. Сегодня на их долю приходится более 62% всего мирового производства мяса птицы. Мясо самок более нежное, но менее выраженное по вкусу. Обычно они весят до 1,5–2 кг.

🐔 Мясо петухов-бройлеров жестче, но ярче по вкусу. Найти их в супермаркете сложно — придется ехать на рынок. Есть блюда, которые рассчитаны именно на мясо петухов: например, французский рецепт петуха в вине. Кастрированные петухи в возрасте 4 месяцев называются каплунами.

🐤 Цыплята-корнишоны — это самые маленькие курицы на прилавках. Они могут весить до 200–300 грамм. Собственно цыплятами называют молодых кур, забитых до шестимесячного возраста, весом не больше 700 грамм.

🥚 Взрослые курицы-несушки в возрасте 14–15 месяцев будут жесткими и безвкусными, поэтому их называют суповыми.

🌽 Желтый цвет кожи появляется у куриц, вскормленных кукурузным комбикормом: он придает мясу сладость и легкий ореховый привкус. Также иногда их называют «корниш».

🏡 Самое вкусное и насыщенное мясо у фермерских куриц со свободным выгулом, но оно более жесткое. Важно понимать, что с контролем у фермеров хуже: курица всеядна и может заразиться от корма, который найдет. На птицефабриках курицы почти не двигаются: мясо будет более рыхлым и безвкусным, но каждая курица проверена на болезни.

Как выбрать курицу 🔻

Куриное мясо не вызревает и от хранения в упаковке не становится интереснее, поэтому покупать его надо как можно более свежим.

👀 Тушка должна быть розоватой, а не серой. Не должно быть синюшности или кровоподтеков: это говорит о неправильном забое, от которого мясо может стать жестким.

🕋 Нет смысла покупать халяльную курицу просто так: обычно всех куриц выращивают вместе, но халяльных забивают в отдельном помещении.

💉 Следите, чтобы на кожице не было дырочек: такая курица может быть «накачана» водой.

Благовещенск | «Росконтроль» проверил тушки цыплят-бройлеров и занес одну из фирм в «черный список»

«Росконтроль» оценил тушки цыплят-бройлеров семи известных брендов. Их проверили на безопасность и качество — не содержит ли мясо вредных микроорганизмов или антибиотиков с гормонами, а также на вкус и запах.

В лабораторию отправились бройлеры фирм «Мираторг», «Ясные зори», «Моссельпром», «Первая свежесть», «Петелинка», «Первым делом» и «Приосколье».

Часть образцов подвела проверка на органолептические показатели. Например, при вскрытии пакета с цыпленком «Первым делом» вылилась красноватая жидкость. Это признак того, что тушка, возможно, была плохо обескровлена. Небольшие кровоподтеки обнаружены на образцах «Моссельпрома», «Первой свежести», «Петелинки» и «Приосколья».

В тушке «Моссельпрома» эксперты определили посторонний запах, он же сохранился и в получившемся бульоне. Бройлер «Петелинки» тоже имел посторонний запах, но в готовом бульоне он уже не ощущался.

Признаков инъекций из жира и мяса низших сортов, которую могут вводить в мясо для увеличения его массы, в образцах не обнаружили.

— Бытует представление о том, что курам вводят гормоны роста или стероидные гормоны, чтобы мяса было больше. В качестве доказательства часто приводят размеры куриных тушек, которые продаются в магазинах. Чтобы установить, так ли это, мы включили соответствующую проверку в наше исследование. И во всех проверенных образцах гормоны, присутствие которых в продукции из мяса птицы не допускается, также не были обнаружены. На самом деле анатомические особенности наподобие большого размера характерны именно для бройлеров и обусловлены тем, что при выведении этих пород птицы проводился отбор животных с максимальной продуктивностью по мясу, — рассказала главный эксперт «Росконтроля» Ирина Аркатова.

Бытует представление о том, что курам вводят гормоны роста или стероидные гормоны, чтобы мяса было больше

Лучшую оценку — 70 баллов — получил образец «Приосколья». Также «Росконтроль» рекомендовал к покупке продукцию «Мираторг», «Ясные зори» и «Первая свежесть».

Тушки брендов «Петелинка» и «Первым делом» были добавлены в список товаров с замечаниями, а цыпленок «Моссельпрома» попал в «черный список» «Росконтроля». Помимо постороннего запаха, эксперты обнаружили в мясе признаки неправильного или длительного хранения.

Данный материал опубликован на сайте BezFormata 11 января 2019 года,
ниже указана дата, когда материал был опубликован на сайте первоисточника!

«Росконтроль» проверил тушки цыплят-бройлеров и занес одну из фирм в «черный список»

«Росконтроль» оценил тушки цыплят-бройлеров семи известных брендов. Их проверили на безопасность и качество — не содержит ли мясо вредных микроорганизмов или антибиотиков с гормонами, а также на вкус и запах.

В лабораторию отправились бройлеры фирм «Мираторг», «Ясные зори», «Моссельпром», «Первая свежесть», «Петелинка», «Первым делом» и «Приосколье».

Часть образцов подвела проверка на органолептические показатели. Например, при вскрытии пакета с цыпленком «Первым делом» вылилась красноватая жидкость. Это признак того, что тушка, возможно, была плохо обескровлена. Небольшие кровоподтеки обнаружены на образцах «Моссельпрома», «Первой свежести», «Петелинки» и «Приосколья».

В тушке «Моссельпрома» эксперты определили посторонний запах, он же сохранился и в получившемся бульоне. Бройлер «Петелинки» тоже имел посторонний запах, но в готовом бульоне он уже не ощущался.

Признаков инъекций из жира и мяса низших сортов, которую могут вводить в мясо для увеличения его массы, в образцах не обнаружили.

— Бытует представление о том, что курам вводят гормоны роста или стероидные гормоны, чтобы мяса было больше. В качестве доказательства часто приводят размеры куриных тушек, которые продаются в магазинах. Чтобы установить, так ли это, мы включили соответствующую проверку в наше исследование. И во всех проверенных образцах гормоны, присутствие которых в продукции из мяса птицы не допускается, также не были обнаружены. На самом деле анатомические особенности наподобие большого размера характерны именно для бройлеров и обусловлены тем, что при выведении этих пород птицы проводился отбор животных с максимальной продуктивностью по мясу, — рассказала главный эксперт «Росконтроля» Ирина Аркатова.

Бытует представление о том, что курам вводят гормоны роста или стероидные гормоны, чтобы мяса было больше



Лучшую оценку — 70 баллов — получил образец «Приосколья». Также «Росконтроль» рекомендовал к покупке продукцию «Мираторг», «Ясные зори» и «Первая свежесть».

Тушки брендов «Петелинка» и «Первым делом» были добавлены в список товаров с замечаниями, а цыпленок «Моссельпрома» попал в «черный список» «Росконтроля». Помимо постороннего запаха, эксперты обнаружили в мясе признаки неправильного или длительного хранения.

Бройлеры РОСС 308 (ROSS 308) – нормативные показатели

Бройлеры РОСС 308 (ROSS 308) обладают универсальными качествами и отвечают широкому спектру требований, которые предъявляются к конечному продукту. Описание нормативных показателей по выращиванию цыплят кросса ROSS 308 поможет Вам оценить, на сколько выгодно будет купить и выращивать цыплят этой породы.

Продуктивные показатели бройлеров РОСС 308 (ROSS 308)

Данные нормативные показатели демонстрируют продуктивность бройлеров этой породы, достигаемую при использовании эффективной технологии в оптимальных условиях содержания поголовья, а также применяя схемы кормления, приведенные в спецификации корма для бройлеров ROSS 308.

На достижение нормативных показателей бройлеров могут влиять следующие факторы:

  • доступность кормового сырья может ограничивать уровень потребления питательных веществ;
  • экстремальные климатические условия могут снижать продуктивность;
  • экономические предпосылки могут ограничивать выбор производственной системы.

Таким образом, средние показатели продуктивности могут быть ниже, чем нормативные.

В приведенных таблицах все нормативные значения кросса ROSS 308 округлены, что может вызывать небольшие неточности при использовании нормативной продуктивности для расчета других производственных показателей.

Выход мяса может варьироваться между перерабатывающими цехами, в зависимости от используемого оборудования (технология охлаждения тушки, автоматическая или ручная обвалка) а также точности порционной разделки.

Ключевые технологические аспекты выращивания бройлеров РОСС 308 (ROSS 308)

ROSS 308 — это сильный, быстрорастущий бройлер, имеющий эффективную кормоконверсию и высокие мясные показатели. Этот кросс выведен для удовлетворения спроса потребителей, которым требуется постоянство продуктивных результатов, а также универсальность продукции, способная удовлетворить рынок с широким ассортиментом мясной продукции. Экономическая эффективность производства куриного мяса зависит от высокой продуктивности производства бройлеров РОСС 308, а для достижения этого важно соблюдение следующих аспектов технологии:

  • Оптимизировать качество цыплят, применяя эффективные технологические методы условий инкубации, хранения и транспортировки.

  • Создать условия раннего выращивания, обеспечивающие легкий доступ цыплят к воде и корму, начиная с момента посадки, а также естественный переход от использования дополнительных поилок и кормушек к применению автоматизированной системы кормления и поения в возрасте 4-5 дней. Применять легко усвояемый стартовый корм, имеющий оптимальный баланс питательных веществ.

  • Содержать цыплят в оптимальном температурном режиме, наблюдая за их поведением, при этом не допуская значительного снижения относительной влажности воздуха (менее 50%). Создать программу минимальной вентиляции, начиная со дня посадки цыплят.

  • Наблюдать за наполнением зоба, активностью потребления корма и воды, а также за живой массой 7 дней — для контроля эффективности условий раннего содержания.

  • Содержать кур бройлеров в режиме температурного комфорта в течение всего периода выращивания. Быстро растущие бройлеры выделяют значительное количество метаболического тепла, особенно во второй половине производственного цикла. Поддержание температуры окружающей среды ниже 21°С, начиная с возраста 21 день, будет способствовать оптимизации роста бройлеров.

  • Поддерживать высокий режим биозащиты и гигиены для снижения риска заболеваний.

Табл. 1. Продуктивные показатели смешанного стада бройлеров РОСС 308 (ROSS 308)

[spoiler]

ДеньЖивая масса (г)Суточный привес (г)Сред. сут. привес/ нед. (г)Суточное потребление корма (г)Потребл. с нараст. итогом (г)Конверсия корма
042
1561413130,237
2721517300,419
3891820500,561
41092023730,673
513223271000,762
615725311310,834
71852820,48351660,893
821731392040,942
925135432470,984
1028938482951,021
1133041533481,053
1237544584061,083
1342248634691,110
144735141,12695381,136
1552754746121,160
1658557806921,183
1764560867781,206
1870963928701,228
1977566989681,249
208446910410721,270
219167263,1911011821,291
229907411612981,312
2310667712214211,332
2411457912815491,353
2512268113416841,373
2613098314018241,394
2713938514619701,414
2814798680,5515221221,434
2915678815722791455
3016568916324421,475
3117469016826101,495
3218369117327831,515
3319289217829611,536
3420209218331441,556
3521139390,5618733311,576
3622079319235231,597
3723009419637191,617
3823949420039191,637
3924889420441231,658
4025819420843311,678
4126759421145431,698
4227689393,5721547571,719
4328619321849751,739
4429549322151961,759
4530469222454201,780
4631379122756471,800
4732289122958761,820
4833189023161071,841
4934078991,2223363411,861
5034958823565761,882
5135828723768131,902
5236698623970521,922
5337548524072931,943
5438388424175341,963
5539208324377761,984
5640028184,9624380202,004
5740828024482642,025
5841607924485082,045
5942387724587532,066
6043137624589982,086
6143887424592422,107
6244607324494872,127
6345317175,8424497302,147
6446006924399732,168
65466867242102162,189
66473366241104562,209
67479764240106962,230
68485962238109342,250
69491960236111702,271
7049785863,8234114052,291

ПРИМЕЧАНИЯ

  1. Живая масса в хозяйстве (т. е. наличие корма в кишечнике).
  2. Потребление корма на живую птицу.
  3. Кормоконверсия включает живую массу при посадке и не учитывает отход.

Все нормативные значения в таблице округлены, что может вызывать небольшие неточности при использовании нормативной продуктивности для расчета других производственных показателей.

[/spoiler]

Табл. 2. Продуктивные показатели петухов бройлеров РОСС 308 (ROSS 308)

[spoiler]

ДеньЖивая масса(г)Суточный привес(г)Сред.сут. привес/нед. (г)Суточное потребление корма (г)Потребл. с нараст. итогом (г)Конверсия корма
042
1561412120,217
2711516280,390
3891819470,529
41092023700,641
51322327960,732
615726311270,808
71862920,54351620,871
821832392010,924
925335442450,969
1029139492941,009
1133342543481,044
1237946604081,076
1342849654731,105
144815342,11715441,132
1553756776211,157
1659660837041,181
1766063907941,203
1872667968901,226
19796701039931,247
208697310911021,268
219457666,4211612191,289
2210257912313421,309
2311078213014711,329
2411918513616081,350
2512788714317511,369
2613688915019001,389
2714599215620561,409
2815539486,8116322191,429
2916499516923881,448
3017469717525631,468
3118449918127441,488
32194410018729301,507
33204510119231221,527
34214710219833201,546
35225010399,5620335231,566
36235310320837311,585
37245710421339441,605
38256210421741611,624
39266610422243831,644
40277110522646091,664
41287510423048391,683
422979104104,2123450731,703
43308310423753101,722
44318710424155511,742
45329010324457951,761
46339310224760411,781
47349410225062911,800
48359510125265431,820
493695100102,2825467971,839
5037959925770541,859
5138939825973131,879
5239909726075731,898
5340869626278351,918
5441809526380981,937
5542749326583631,957
5643669295,7926686291,976
5744579126788951,996
5845468926791632,016
5946348826894312,035
6047218726896992,055
6148068526999682,074
62488983269102372,094
6349718286,43269105062,113
64505180269107752,133
65513079268110432,153
66520777268113112,172
67528275267115782,192
68535674267118452,211
69542872266121102,231
7054987075,35265123752,251

[/spoiler]

Табл. 3. Продуктивные показатели кур бройлеров РОСС 308 (ROSS 308)

[spoiler]

ДеньЖивая масса(г)Суточный привес(г)Сред.сут.привес/нед. (г)Суточное потребление корма (г)Потребл. с нараст. итогом (г)Конверсия корма
042
1561414140,257
2721518320,449
3891821530,594
41092024770,705
513223271040,791
615725311350,860
71852820,42341690,915
821631382080,960
925034422500,999
1028737472971,033
1132740513481,063
1237143564041,090
1341746614651,116
144664940,13665311,140
1551852716031,163
1657355776791,186
1763158827621,208
1869160888491,229
1975363939421,251
20818659910411,272
218866759,9610411451,293
229556911012551,314
2310267111513701,335
2410997312014911,356
2511747512616161,377
2612507613117471,398
2713277713618831,419
2814067974,2914120241,440
2914858014621701,461
3015668015023201,482
3116478115524751,503
3217298215926341,524
3318118216327981,545
3418948316829651,566
3519778381,5617131371,587
3620608317533121,608
3721438317934911,629
3822268318236731,650
3923098318638591,671
4023928318940481,692
4124758319242401,713
4225578282,9419544351,734
4326398219846331,756
4427218120148341,777
4528028120350371,798
4628828020552431,819
4729618020854501,840
4830407921056601,862
4931187880,1621258721,883
5031967721360851,904
5132727621563001,925
5233477521665161,947
5334227421767331,968
5434957321869521,989
5535677221971712,011
5636377174,1322073912,032
5737076922076112,053
5837756822078312,075
5938416722080512,096
6039066522082712,117
6139706321984902,139
6240316221887082,160
6340916064,8421789252,182
6441495821691412,203
6542065621493552,224
6642605421295672,246
6743125221097772,267
6843635020899852,289
69441148205101902,310
7044574652,25202103922,332

[/spoiler]

Выход тушки бройлеров РОСС 308 (ROSS 308)

Приведенные диаграммы показывают, что выход основных порционных частей зависит от увеличения живой массы каждого пола. Здесь приводится два типа переработки: потрошеная тушка, пропорционально разделанная на мясо грудки, бедра и голени для демонстрации результатов разделки, или тушка, разделанная на мясо грудки и мясо ноги для демонстрации результатов обвалки.

ROSS 308 петух – разделка

ROSS 308 курица – разделка

ROSS 308 петух – обвалка

ROSS 308 курица – обвалка

Терминология:

Потрошенная тушка % — потрошеная тушка (без шеи, абдоминального жира и внутренних органов) в процентном соотношении к живой массе.

Грудка % — грудная мышца (без кожи и костей) в процентном соотношении к живой массе.

Бедро/Голень % — бедро/голень (с кожей и костями) в процентном соотношении к живой массе.

Мясо ноги % — сумма обваленного бедра (без кости) и обваленной голени (без кожи) в процентном соотношении к живой массе.

Примечание: Данные значения представляют собой значения сухого выхода, т.е. не включают остаточную влагу, получаемую в результате процесса охлаждения или переработки. Выход частей тушки бройлера будет варьироваться между цехами переработки в зависимости от типа применяемого оборудования, а также точности порционной разделки.

В Украине купить цыплят бройлеров породы РОСС 308 можно в Пологовской инкубаторной станции. Информацию о такой возможности Вы можете получить из графика реализации, а также позвонив по телефонам или отправив электронное письмо на адреса, указанные в разделе «Контакты».

Загрузка… Следующая запись Цыплята бройлеры КОББ 500 (COBB 500) – преимущества выращивания

Влияние стероидного стимулятора роста на морфологические и биохимические адаптации печени бройлеров

Vet World. 2020 ноя; 13 (11): 2330–2337.

Насрин Султана

1 Кафедра анатомии и гистологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

Марсия Афросе

1 desh Кафедра анатомии и гистологии, факультет ветеринарии Бангладеш , Мименсингх, Бангладеш

Кази Рафик

2 Кафедра фармакологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

1 Кафедра анатомии и гистологии, Факультет ветеринарных наук Бангладеш, Бангладешский сельскохозяйственный университет , Бангладеш

2 Кафедра фармакологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

Поступила в редакцию 14 июня 2020 г . ; Принята в печать 29 сентября 2020 г.

Открытый доступ. Эта статья распространяется в соответствии с условиями Международной лицензии Creative Commons Attribution 4.0 (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/), которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии, что вы укажете соответствующую ссылку. оригинальному автору (ам) и источнику, дайте ссылку на лицензию Creative Commons и укажите, были ли внесены изменения. Отказ от лицензии Creative Commons Public Domain Dedication (http://creativecommons.org/publicdomain/zero/1.0 /) применяется к данным, представленным в этой статье, если не указано иное.

Abstract

Цель:

Исследование было проведено для наблюдения за влиянием дексаметазона (DEX) на общее исследование и гистоморфометрию печени, а также на изменения биохимических параметров бройлеров.

Материалы и методы:

Девяностодневных цыплят были собраны и распределены в одну из трех групп: контрольная, группа A и группа B. Контрольная группа, группа A и группа B кормились в течение 28 дней домашним животным. рацион, коммерческий рацион для бройлеров и домашний рацион с DEX (7 мг / кг корма), соответственно.Образцы печени собирали у отдельных птиц после умерщвления на 7, 14, 21 и 28 дни эксперимента. Изучены морфометрические характеристики (длина, вес, цвет, текстура) печени. Гистоморфологические изменения печени оценивали с помощью стандартного окрашивания гематоксилином и эозином. Для измерения биохимических показателей образцы крови отбирали на 7, 14, 21 и 28 дни эксперимента. Функциональный тест печени проводился спектрофотометрически путем анализа биохимических маркеров сыворотки крови, то есть аланинаминотрансферазы (АЛТ), аспартатаминотрансферазы и щелочной фосфатазы (ЩФ).Для обнаружения печеночных стероидов выполняли тонкослойную хроматографию (ТСХ).

Результаты:

Геморрагия и гиперемия печени были обнаружены у бройлеров группы B. Не было обнаружено значительных изменений в весе и длине печени; У птиц группы B наблюдалось только численное уменьшение веса и длины. Ширина печени увеличилась в группе B на 21 день. Гистологическое исследование печени показало накопление липидных капель, скопление синусоидов и центральных вен у бройлеров группы B.Биохимические анализы показали повышенные уровни ALT в группе B по сравнению с группой A на 14 день эксперимента. Оценка ТСХ показала положительный результат в группе В на 28 день эксперимента.

Заключение:

Результаты настоящего исследования показывают, что DEX может изменять морфологию печени и концентрацию АЛТ в циркуляции бройлеров.

Ключевые слова: бройлер, дексаметазон, стимулятор роста, печень

Введение

В настоящее время птицеводство становится ведущей отраслью сельского хозяйства Бангладеш.В течение последних двух десятилетий этот сектор рос примерно на 35% в год [1]. Эта отрасль обладает огромным потенциалом для ускорения экономического роста страны, а также обеспечения продовольственной безопасности. Совместное исследование IFPRI / FAO / ILRI показало, что мировое производство и потребление мяса будет продолжать расти с 233 миллионов метрических тонн (МТ) в 2000 году до 300 миллионов МТ в 2020 году, при этом производство мяса птицы увеличится с 9 МТ в 1960 году. до 68 тонн в 2000 г. из-за увеличения национального спроса [2].Это привело к открытию и широкому использованию ряда «стимуляторов роста (GP)». ГП добавляются в рацион с целью повышения продуктивности животных за счет увеличения скорости роста, повышения эффективности преобразования корма, увеличения выживаемости и снижения смертности домашней птицы [3]. Кроме того, терапевты становятся все более популярными в качестве кормовых добавок из-за их благоприятного воздействия на здоровье кишечника и иммунитет [4,5].

Глюкокортикоиды (ГК) — стероидные гормоны, содержащие как природные, так и синтетические производные [6].Из коры надпочечников разных видов выделено более 50 стероидов [7]. Только несколько стероидов в первую очередь ответственны за влияние коры надпочечников на углеводный, белковый и жировой обмен. Таким образом, эффекты, опосредованные ГК, включают, например, усиление глюконеогенеза, снижение периферической утилизации глюкозы, усиление антагонизма к инсулину, усиление катаболизма белков, снижение накопления жира и стимулированные противовоспалительные эффекты [8], включая уменьшение циркулирующих лимфоцитов, эозинофилов и фиксированных лимфоцитарные ткани и уменьшение местных воспалительных процессов [9]. Дексаметазон (DEX) представляет собой синтетическое производное ГК, основное терапевтическое использование которого связано с его противовоспалительными и иммунодепрессивными свойствами [8]. Большая часть DEX, используемого в ветеринарии, предназначена для борьбы с воспалениями или аллергией. Таким образом, злоупотребление кортикостероидом в этой категории не является редкостью. В мясном скотоводстве DEX обычно используется для повышения показателей роста крупного рогатого скота [6,10,11]. Незаконное употребление стероидов GP в высоких дозах, то есть 7 мг / кг [12], и их остатки в пищевых продуктах могут негативно повлиять на умственное и физическое развитие детей и фертильность женщин, вызвать рак и повредить жизненно важные органы, такие как мозг, печень и т. Д. почки и сердце [13].Из-за этих проблем со здоровьем некоторые стероидные терапевты были запрещены к использованию у животных, производящих пищу, Европейским Союзом (ЕС) [14,15]. Чтобы защитить здоровье потребителей от любых потенциальных рисков, ЕС одобрил использование DEX в животноводстве только в терапевтических целях и установил соответствующие максимальные пределы остатков в тканях и молоке, предназначенном для потребления человеком (Совет Европейских сообществ 1990 г. , Постановление Совета 90/2377 / EEC) [14].

Печень, самая большая железа в организме, используется для фильтрации вредных токсинов из крови и для синтеза витаминов и минералов.Это также важно для баланса уровней белков, холестерина и сахаров. Кроме того, печень используется для производства желчи, помогающей переваривать пищу. В общем, ГК могут вызывать подавление иммунитета, что приводит к неспецифическому росту бактерий, вирусов и паразитов в организме, а токсины этих микробов также могут вызывать повреждение печени. ГК являются ферментативными и термостойкими и обычно откладываются в печени [16], что приводит к гепатотоксичности. Из-за гепатотоксичности некоторые специфические для печени ферменты (аланинаминотрансфераза [ALT], аспартатаминотрансфераза [AST] и щелочная фосфатаза [ALP]) могут выделяться в кровь.В общем, повышенные концентрации циркулирующих ферментов являются показателями острого поражения органа, а не снижения функции органа. Повышение концентрации АСТ и АЛТ в плазме является наиболее специфическим индикатором повреждения клеток печени [17].

Настоящее исследование направлено на изучение гистоморфологии печени и изменений биохимических параметров крови бройлеров в ответ на стероид GP DEX.

Материалы и методы

Этическое разрешение

Все процедуры обращения с животными соответствовали правилам ухода и использования, установленным Комитетом по благополучию животных и этике экспериментов, Сельскохозяйственный комитет Бангладеш, Мименсингх (AWEEC / BAU / 2019 [23]) .

Птицы и менеджмент

Настоящий эксперимент проводился в январе 2019 года на кафедре анатомии и гистологии Бангладешского сельскохозяйственного университета, Мименсингх-2202. Для эксперимента рассматривали девяностодневных цыплят (DOC) линии «Cobb 500». Их выращивали в помещении с контролируемой средой в течение 28 дней в экспериментальном сарае. Бройлеров кормили стандартным стартовым рационом и рационом откорма бройлеров на протяжении всего экспериментального периода.

Схема эксперимента

Всего 90 бройлеров DOC «Cobb 500» случайным образом были разделены на три равные группы (каждая n = 30): контрольная группа, группа A и группа B. Птицы контрольной группы, группы A и группы B выращивались на домашнем рационе бройлеров, коммерческом рационе бройлеров и домашнем рационе бройлеров с высокой дозой DEX, соответственно. Образцы крови из крыловой вены и образцы печени собирали на 7, 14, 21 и 28 дни экспериментального периода. Образцы печени были взяты в асептических условиях у каждого бройлера для общего наблюдения, гистологического исследования и тонкослойной хроматографии (ТСХ).

Опытный рацион

Птица контрольной группы выращивалась на домашнем рационе бройлеров.Бройлеры группы А были выращены на бройлерном рационе коммерческого типа. Бройлеры группы B выращивались на домашнем рационе бройлеров, включающем высокую дозу добавки DEX (7,0 мг / кг массы тела) в корме. Коммерческий рацион был привезен компанией Nourish Poultry and Hatchery Ltd., Бангладеш. Домашний рацион был составлен в соответствии с ингредиентами коммерческого рациона (). Каждый ингредиент рациона готовился отдельно, а затем смешивался с домашним рационом.

Таблица-1

Кормовые ингредиенты и химический состав рациона.

3

9008,00 кг 900
Состав Предстартерный бройлер Стартовый бройлер Бройлер откормочный
Кукуруза 43,00 кг 40,32 кг 43,64 кг
90,00 90,00 Пшеница 10,00 кг 10,00 кг
Рисовая полироль 4,00 кг 8.00 кг 10,00 кг
Соя 26,00 кг 29,00 кг 22,50 кг
Мясно-костная мука 9,00 кг 897yster 900 1,00 кг 1,00 кг 1,00 кг
Соль 300 г 300 кг 250 г
Метионин 200 г 18088 900 900 30 г 30 г 30 г
Витаминный премикс (бройлер) 250 г 250 г 250 г
Кормовой фермент
Соевое масло 6. 5 кг 3,5 кг 4,0 кг
DCP 2,50 кг 2,50 кг
Хлорид холина 100 г 100 г

100,00 кг 100,00 кг 100,00 кг

Общее исследование

При общем исследовании учитывались такие параметры, как цвет, длина и вес. Цвет печени сравнивали в контрольной и опытной группах путем визуального наблюдения.Длина и ширина печени у разных групп измеряли по градуированной шкале.

Гистология печени

Образцы печени были быстро удалены и сохранены в 10% нейтральном забуференном формалине. После 24-часового периода фиксации ткани обезвоживали, а затем заливали парафином. Парафиновые блоки разрезали на срезы толщиной 6 мкм с помощью скользящего микротома (MIC 509, Euromex, Япония). Образцы помещали на предметные стекла, сушили в течение ночи, а затем окрашивали гематоксилином и эозином для определения морфологических изменений.

Биохимические исследования

Пять миллилитров крови были собраны без антикоагулянта в стерильные стеклянные пробирки. Пробирки с кровью помещали в наклонное положение при комнатной температуре для свертывания. Затем пробирки помещали в холодильник на ночь при 4 ° C. Кровь центрифугировали при 1000 об / мин в течение 15 мин для сбора сыворотки. Затем сыворотку хранили во флаконе с завинчивающейся крышкой и хранили при -20 ° C до дальнейшего использования. Измерение биохимических показателей проводили спектрофотометром на анализаторе Humalyzer 2000 (Wiesbaden, Германия).

TLC

Образцы печени на 28 день из различных экспериментальных групп были рассмотрены для качественного тестирования. Сначала образцы смешивали с помощью ступки и пестика. Затем добавляли PBS (pH 6,5) и образцы гомогенизировали с помощью вихревой машины (Vortex-XHC, Wincom, Китай). После этого добавляли 30% трихлоруксусную кислоту и смесь центрифугировали (Hettich D-78532, Германия) при 6000 об / мин в течение 20 минут. Затем супернатант жидкости переносили в пробирку Сокола с равным количеством диэтилового эфира и собирали нижний слой во флакон с завинчивающейся крышкой.Карандашом была сделана тонкая отметка внизу пластинки для ТСХ, чтобы нанести пятна образца. Затем образцы растворов наносили на отмеченные на линии пятна на равных расстояниях. Подвижную фазу заливали в камеру для ТСХ до ровной выемки на несколько сантиметров выше дна камеры. Смоченную фильтровальную бумагу в подвижной фазе помещали на внутреннюю стенку камеры для поддержания равной влажности. Пластину, приготовленную с пятнами образца, затем помещали в камеру для ТСХ так, чтобы сторона пластины с линией образца была обращена к подвижной фазе, и камеру закрывали крышкой. Планшет погружали так, чтобы пятна образца находились значительно выше уровня подвижной фазы для проявления. Планшеты удаляли и давали высохнуть при комнатной температуре. Пятна образца детектировали в подходящей камере УФ-излучения.

Статистический анализ

Данные, полученные при измерении веса, длины и ширины печени, а также биохимических параметров (АЛТ, АСТ и ЩФ), были проанализированы с использованием процедуры повторных измерений в Статистическом пакете программного обеспечения социальных наук версии 19. (IBM Corp., Нью-Йорк, США). Различия между средними были выявлены с помощью множественных тестов Дункана. Уровень значимости был установлен на уровне p <0,05.

Результаты

Общее наблюдение

Общий вид печени

В печени бройлеров контрольной группы серьезных изменений не наблюдалось. Было обнаружено, что цвет печени был красноватым в контрольной группе, тогда как он был бледным у бройлеров группы А. Застой был обнаружен в печени бройлеров группы А на 21 и 28 дни эксперимента (). И геморрагическая, и перегруженная печень были обнаружены у бройлеров группы B () на 14, 21 и 28 дни эксперимента.

Репрезентативные изображения общего наблюдения за печенью различных групп бройлеров. Нормальный внешний вид печени в контрольной группе (а), застойная (черная стрелка) печень в группе A (b), а также застойная (c) и геморрагическая (d) печень наблюдались в группе, получавшей дексаметазон, то есть в группе B

Масса печени

Средняя масса печени в контрольной группе, группе A и группе B на 7-й день составляла 3.63 ± 0,24 г, 3,33 ± 0,42 г и 5,25 ± 1,59 г соответственно (). На 14 день наибольший вес наблюдался в группе А (9,25 ± 0,25 г) по сравнению с контрольной группой (7,3 ± 2,23 г) и группой В (6,55 ± 2,21 г). На 21 день эксперимента самый низкий вес печени был зарегистрирован в группе B (14,75 ± 3,75 г) по сравнению с группой A (28,75 ± 1,93 г). Средний вес печени в контрольной группе, группе A и группе B на 28 день составлял 31,25 ± 3,94 г, 32 ± 2,68 г и 29,25 ± 6,54 г соответственно.

Масса печени бройлеров в разных опытных группах в разные дни опытного периода.

Длина печени

Длина печени указана в. Существенных различий между разными группами цыплят-бройлеров не наблюдалось. Только численное уменьшение длины печени бройлеров группы В наблюдалось на 14 и 21 день эксперимента.

Длина печени в разных опытных группах бройлеров в разные дни экспериментального периода (Среднее ± стандартная ошибка).

Ширина печени

Ширина печени трех опытных групп представлена ​​в.Мы наблюдали более высокие средние значения у бройлеров группы B на 21 день эксперимента по сравнению с контролем и группой A.

Ширина печени (среднее ± стандартная ошибка) у бройлеров разных экспериментальных групп в разные дни эксперимента. Различные буквы в качестве надстрочного индекса указывают на существенные различия между разными группами экспериментов.

Гистологическое наблюдение

Печень контрольной группы была обнаружена с нормальной гистологической архитектурой во все временные точки (). На 21-й и 28-й дни застойные явления в синусоидах и центральной вене были обнаружены в участках печени в группе A (), тогда как в эти моменты времени в группе B наблюдались застойные явления в центральной вене и синусоидах, а также скопление жировых капель. (Цифры- а).

Микрографические изображения срезов печени в контрольной группе (10 × и 40 ×). Печень показывает нормальную гистологическую архитектуру (Xa и Xb) (H и E). CV = Центральная вена; S = синусоиды; H = гепатоциты.

Микрографические изображения срезов печени бройлеров группы А (10 × и 40 ×). Группа A демонстрирует синусоидальный застой (Ya), расширенную и перегруженную центральную вену (Yb) на 21 и 28 день срезов печени (H и E). CCV = застойная центральная вена; CS = скопление синусоид.

Фотомикрографические наблюдения срезов печени в группе B (10 ×, 40 ×). Группа B показывает расширенную и перегруженную центральную вену (Za) и перегруженные синусоиды (белая стрелка) (Zb) на 21 и 28 день срезов печени (H и E). CCV = Застой в центральной вене; CS = скопление синусоидов; H = гепатоциты.

Микрографические изображения срезов печени в группе B (10 ×, 40 ×). Капли липидов (черная стрелка) были замечены в срезах печени (Zc) на 28 день в группе B (H и E). CV = Центральная вена; LP = липидные капли.

Биохимический анализ

В настоящем исследовании функциональный тест печени проводился путем измерения сывороточного уровня трех различных биохимических параметров, то есть АЛТ, АСТ и ЩФ, в трех экспериментальных группах на 7, 14, 21 и 28 дни. (). Уровень АЛТ был значительно увеличен в сыворотке группы В на 14 день по сравнению с группой А, тогда как уровень АСТ и ЩФ оставался неизменным у бройлеров всех групп.

(a-c) Влияние стероидного стимулятора роста на измерение ферментов печени в сыворотке различных групп бройлеров (Среднее ± SE).Различные буквы в качестве надстрочного индекса указывают на существенные различия между разными группами экспериментов.

ТСХ

ТСХ — это твердо-жидкостная хроматография, которую можно использовать для проверки идентичности вещества. В образцах печени качественная идентификация DEX была проведена с помощью ТСХ (). Положительным контролем была группа, получавшая DEX, то есть Группа B; отрицательные результаты были получены в контрольной группе и в группе А, которая поддерживалась коммерческим рационом для бройлеров, показав положительные результаты по сравнению с группой В.

Качественная идентификация стероидных веществ производилась методом тонкослойной хроматографии.

Обсуждение

В настоящем исследовании бройлерам скармливали высокие дозы DEX для наблюдения за влиянием GC на грубые и морфологические изменения печени и на изменения биохимических параметров в сыворотке.

Масса тела

Масса тела бройлеров в группе, получавшей DEX, была снижена по сравнению с контрольной группой и группой А в том же эксперименте, проведенном нашей группой [12].Согласно литературным данным [18], DEX может повышать уровень Т3 в плазме и стимулировать метаболические пути в мышцах, которые ответственны за мышечную дистрофию. Группа ученых [19] заявила, что хроническое употребление кортикостероидов в рационе может стимулировать катаболизм белков, что может подавить набор массы тела и снизить потребление корма цыплятами-бройлерами.

Общее наблюдение за печенью

Печень контрольной группы имела красноватый цвет, тогда как в печени групп A и B.Точечные геморрагические поражения были обнаружены у бройлеров группы B. Аналогичные результаты были также получены Даттани и Брук [7] и утверждали, что застойные явления могут возникать из-за микронодулярного цирроза печени.

В настоящем исследовании самый низкий вес печени был зарегистрирован в группе B. Однако вес печени увеличивался с увеличением возраста бройлеров, что в соответствии с результатами, представленными в Cai et al . [20]. Сообщалось, что доля печени (в% от массы тела) цыплят с инъекцией DEX увеличивается на 34% по сравнению с контролем и на 39% у цыплят, получавших парное вскармливание.Другие исследования также наблюдали заметное увеличение массы печени при лечении кортикостероном (КОРТ) [21-24]. Вероятно, что увеличение массы печени может быть вызвано усиленным синтезом жирных кислот и центральными жировыми отложениями в ответе печени на высокие уровни циркулирующего CORT [25,26]. Результаты по весу печени, полученные в нашем исследовании, противоречат результатам другого исследования, проведенного группой исследователей [27]. Относительная и фактическая масса печени была значительно выше у кур, получавших DEX.

Гистоморфологические наблюдения

В печени контрольной группы наблюдалась нормальная гистологическая архитектура. Однако в группе A были обнаружены застойные центральные вены и синусоиды. В группе B застой наблюдался в центральной вене и синусоидах печени на 21 и 28 дни экспериментального периода. Накопление липидных капель также наблюдалось на 28 день в группе B. Сходные результаты были получены и другими группами [28–31], утверждающими, что хроническое повышение уровня GC может быть связано с повышенным включением жира в печени.ГК стимулируют глюконеогенез в печени и увеличивают синтез и хранение гликогена в печени [30]. В ответ на повышенный уровень глюкозы в крови может наблюдаться компенсаторное увеличение секреции инсулина. Лечение DEX может вызывать зависящие от времени изменения уровней глюкозы и инсулина и увеличение секреции инсулина, что приводит к отложению большего количества гликогена в цитоплазме гепатоцитов с течением времени. Группа исследователей [32] наблюдала небольшую цитоплазматическую вакуолизацию, идентифицированную как липидные капли, затрагивающую несколько гепатоцитов.Кроме того, наблюдалась широкая вакуолизация цитоплазмы в результате внутриклеточного отека и накопления липидов. DEX подавляет синтез арахидоновой кислоты и простагландина, которые обычно действуют как антиагрегантные агенты [30]. Это, вместе с вероятным возникновением гипертонии и полицитемии в печени, могло вызвать расширение и застой синусоид, которые были замечены в группе, получавшей DEX в настоящем исследовании.

Биохимические параметры

Повышение уровня АЛТ, АСТ и ЩФ в сыворотке и тканях является наиболее частым признаком заболеваний печени [17].В настоящем исследовании уровень АЛТ был значительно увеличен в сыворотке группы В на 14 день эксперимента по сравнению с группой А. Повышенный уровень фермента АЛТ, высвобождаемый в кровь, может быть связан с повреждением печени, учитывая, что АЛТ является специфическим. при гепатоцитарном некрозе [33,34].

В настоящем исследовании сывороточные уровни AST и ALP в группах A и B существенно не отличались от контрольной группы. Было показано, что обработка DEX может повышать уровни ALT и AST в сыворотке крови бройлеров в возрасте 3 недель; однако достоверной разницы в значениях АЛТ и АСТ на 4, 5 и 6 неделях не было [35].Аналогичное сообщение было найдено в другом исследовании [36]. Эти результаты по ALT и AST соответствуют результатам настоящего исследования. В другом исследовании было замечено, что сывороточные уровни ALP, AST и ALT могут быть снижены у крыс с низкими и высокими дозами DEX с перевязкой желчных протоков из-за холестаза или диффузного повреждения печени [37]. Они объяснили, что это изменение может быть связано с холестазом или диффузным поражением печени.

Метод скрининга

Поскольку ТСХ оказалась успешным методом скрининга для оценки остатков кортикостероидов в тканях разных видов [9,38], мы выбрали тот же метод для обнаружения присутствия DEX в наших образцах.Группа B, которая получала домашнюю диету с DEX, показала положительный результат в отношении остатков DEX в печени по наличию пятен на хроматографической пластине. Аналогичное наблюдение было сделано другой исследовательской группой [39], где образцы тканей анализировались путем попадания на пластину ультрафиолетового света. Как и предполагалось, образцы бройлеров контрольной группы и группы А показали отрицательный результат. Настоящее исследование показывает, что DEX может откладываться в печени бройлеров в ответ на экзогенный GC DEX.

Заключение

При общем наблюдении мы наблюдали постоянный вес печени у разных групп бройлеров во время эксперимента, за исключением небольшого снижения в группе B.Наблюдалось только численное уменьшение длины печени группы B, тогда как ширина печени увеличивалась в этой группе. Застойная и геморрагическая печень наблюдалась в группе B. Нормальная морфология печени была обнаружена в контрольной группе, тогда как застойные центральные вены и синусоиды наблюдались в группах A и B. Липидные капли накапливались в срезах печени бройлеров группы B на 28 день. Уровень АЛТ был значительно повышен в сыворотке группы В. Уровень АСТ и ЩФ не изменился у бройлеров различных экспериментальных групп.Метод скрининга выявил присутствие DEX в тканях печени бройлеров, которым вводили DEX. Наконец, было обнаружено, что DEX изменяет рост и морфологию печени, а также концентрацию ALT в кровообращении цыплят-бройлеров. DEX может сбалансировать вес печени за счет увеличения ширины и уменьшения длины печени у бройлеров.

Вклад авторов

Н.С.: руководитель исследования, концептуализировал и разработал исследование, а также подготовил и отредактировал рукопись.МА: Провел эксперимент, сбор и анализ данных, составление рукописи. КР: Помогал в проведении эксперимента и сборе данных. Все авторы прочитали и одобрили окончательную версию рукописи.

Благодарности

Мы также хотели бы поблагодарить доктора Лауру Уэбб, Боннский университет, Германия, за вычитку рукописи. Доктор Насрин Султана получил исследовательский фонд (грант № 2018/337 / BAU) от Исследовательской системы Бангладешского сельскохозяйственного университета, BAU, Бангладеш.

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих интересов.

Примечание издателя

Veterinary World сохраняет нейтралитет в отношении юрисдикционных требований в отношении опубликованной институциональной принадлежности.

Ссылки

1. Хамид М., Рахман М., Ахмед С., Хоссейн К. Состояние птицеводства в Бангладеш и роль частного сектора в его развитии. Asian J. Poultry Sci. 2017; 11 (1): 1–13. [Google Scholar] 2. Спиди А.В. Мировое производство и потребление продуктов животного происхождения.Nutr. J. 2003; 133 (11): 4048S – 4053S. [PubMed] [Google Scholar] 3. Хасан М.Н., Мостофа М., Сорвар М.Г., Хасан М.Т., Дас К., Хоссай Д.М.Н. Влияние экстракта листьев тулси на прирост живой массы при выращивании бройлеров. Bangl. J. Vet. Med. 2016; 14 (1): 21–25. [Google Scholar] 5. Даш П.К., Верма С.В., Нахаптра К.М. В. Гопал. Отклик бройлеров на определенные характеристики производительности. Indian J. Pharm. Sci. 1992. 27 (3): 103–115. [Google Scholar] 6. Cantiello M, Giantin M, Carletti M, Lopparelli R.M, Capolongo F, Lasserre F, ollo E, Nebbia C, Martin P.Г.П., Пино Т., Дакасто М. Эффекты дексаметазона, вводимого для стимуляции роста, на экспрессию печеночного цитохрома P450 3A у теленка. Biochem. Pharmacol. 2009. 77 (3): 451–463. [PubMed] [Google Scholar] 7. Даттани М.Т., Брук К.Г.Д. Клиническая детская эндокринология Брука. США: Wiley-Blackwell; 2019. стр. 350. [Google Scholar] 8. Watteyn A, Wyns H, Plessers E, Russo E, De Baere S, De Backer P, Croubels P. Фармакокинетика дексаметазона после внутривенного и внутримышечного введения цыплятам-бройлерам.Вет. J. 2013; 195 (2): 216–220. [PubMed] [Google Scholar] 9. Юань Y, Xu C, Peng C, Jin Z, Chen W, Liu L. Аналитические методы обнаружения остатков кортикостероидов в пищевых продуктах животного происхождения. Крит. Rev. Anal. Chem. 2008. 38 (4): 227–241. [Google Scholar] 10. Рейг М., Мора Л., Наварро Дж. Л., Толдра Ф. Метод хроматографии для скрининга и подтверждающего обнаружения дексаметазона. Meat Sci. 2006. 74 (4): 676–680. [PubMed] [Google Scholar] 11. Карраро Л., Феррарессо С., Кардаццо Б., Ромуальди К., Монтесисса С., Готтардо Ф., Патарнелло Т., Кастаньяро М., Барджеллони Л.Профили экспрессии скелетных мышц у молодых бычков, получавших стероидные стимуляторы роста. Physiol. Геномика. 2009. 38 (2): 138–148. [PubMed] [Google Scholar] 12. Афросе М., Султана Н., Ислам М.Р.Физиологические реакции кортикостероидов, дексаметазона у цыплят-бройлеров. Int. J. Sci. Res. 2018; 7 (12): 1459–1463. [Google Scholar] 13. Эльмаждуб А., Гарбадж А., Аболгаит С., Эль-Махмуди А. Оценка болденона как стимулятора роста бройлеров: аспекты безопасности и качества мяса. J. Food Drug Anal. 2016; 24 (2): 284–292.[PubMed] [Google Scholar] 14. Bozzetta E, Pezzolato M, Maurella C, Varello K, Richelmi G.B, Draisci R, erranti C, D’Angelo A, Caramelli M. Разработка усовершенствованного гистопатологического подхода для выявления незаконного обращения с низкими дозами дексаметазона у телят. Пищевая добавка. Contam. Часть A. 2011; 28 (9): 1187–1192. [PubMed] [Google Scholar] 15. Бьянкотто Дж., Стелла Р., Барруччи Ф., Лега Ф, Анджелетти Р. Концентрации стероидов в моче у быков при анаболическом лечении имплантатом revalor-XS®. J. Anal. Методы Chem 2016.2016: 8013175. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 16. Giantin M, Lopparelli RM, Zancanella V, Martin PG, Polizzi A, Gallina G, Gottardo F, Montesissa C, Ravarotto L, Pineau T, Dacasto M. Влияние незаконного дексаметазона на ферменты метаболизма печеночных лекарств и связанные факторы транскрипции мРНК и их потенциал использовать в качестве биомаркеров у крупного рогатого скота. J. Agric. Food Chem. 2009. 58 (2): 1342–1349. [PubMed] [Google Scholar] 17. Каммон А.М., Брар Р.С., Банга Х.С., Соди С. Патолого-биохимические исследования гепатотоксичности и нефротоксичности при воздействии хлорпирифоса и имидаклоприда у кур-несушек.Вет. Архив. 2010. 80 (5): 663–672. [Google Scholar] 18. Aengwanich W. Влияние дексаметазона на физиологические изменения и продуктивность бройлеров. Азиатская J. Anim. Вет. Adv. 2007. 32 (2): 157–161. [Google Scholar] 19. Хаяси К., Нагай Ю., Оцука А., Томита Ю. Влияние диетического кортикостерона и трилостана на рост и обмен белка в скелетных мышцах петушков-бройлеров. Br. Пульт. Sci. 1994. 35 (5): 789–798. [PubMed] [Google Scholar] 20. Cai Y, Song Z, Zhang X, Wang X, Jiao H, Lin H. Повышенный de novo липогенез в печени способствует усиленному отложению жира у цыплят-бройлеров, подвергшихся воздействию дексаметазона ( Gallus gallus domesticus) Comp.Biochem. Physiol. Часть CToxicol. Pharmacol. 2009. 150 (2): 164–169. [PubMed] [Google Scholar] 21. Донг Х., Лин Х., Цзяо Х., Сун З., Чжао Дж., Цзян К. Изменение развития и метаболизма белков в скелетных мышцах цыплят-бройлеров ( Gallus gallus domesticus) кортикостероном. Комп. Biochem. Physiol. Мол. Интегр. Physiol. 2007. 147 (1): 189–195. [PubMed] [Google Scholar] 22. Feng Y, Hu Y, Hou Z, Sun Q, Jia Y, Zhao R. Хроническое воздействие кортикостерона вызывает воспаление и фиброз печени в сочетании с m 6 А-связанное посттранскрипционное подавление белков теплового шока у цыплят.Шапероны клеточного стресса. 2020; 25 (5): 47–56. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 23. Паролини М., Поссенти К.Д., Секоманди С., Карбони С., Каприоли М., Руболини Д., Романо А, Саино Н. Пренатальные независимые и комбинированные эффекты витамина Е и кортикостерона в желтке на рост эмбриона и окислительный статус у желтоногой чайки. J. Exp. Биол. 2019; 222 (10): jeb199265. [PubMed] [Google Scholar] 24. Ким И, Ким Дж, Юн Х, Чой Й. Влияние диетического кортикостерона на цвет желтка и качество яичной скорлупы у кур-несушек.Anim. Biosci. 2015; 28 (6): 840–846. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 25. Данфорд Э.С., Ридделл М.С. Метаболические последствия глюкокортикоидов при диете с высоким содержанием жиров и противодействие физическим упражнениям. Метаболиты. 2016; 6 (4): 44. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 26. Линь Х, Суй С., Цзяо Х, Буйсе Дж, Декюпере Э. Нарушение развития цыплят-бройлеров из-за стресса, имитируемого воздействием кортикостерона. Комп. Biochem. Physiol. B Biochem. Мол. Биол. 2006. 143 (3): 400–405. [PubMed] [Google Scholar] 27.Цай Й, Сонг З., Ван Х, Цзяо Х., Линь Х. Дексаметазон-индуцированный липогенез печени у цыплят ( Gallus gallus domesticus) является инсулинозависимым. Стресс. 2011. 14 (3): 273–281. [PubMed] [Google Scholar] 28. Харви I, Стивенсон Э. Дж., Редд Дж. Р., Транкс К. Т., Хохберг И., Bridges N.Q.D. Нарушения метаболизма, вызванные глюкокортикоидами, усугубляются при ожирении. BioRxiv 2017.09.06. 2017: 184507. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 29. Ду В.В., Лю Ф., Шан С.В., Ма Х.С., Гупта С., Джин Т., Спанер Д., Крылов С.N, Zhang Y, Ling W, Yang B.B. Ингибирование индуцированного дексаметазоном развития жировой дистрофии печени путем снижения уровней mir-17-5p. Мол. Ther. Нуклеиновых кислот. 2015; 23 (7): 1222–1233. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 31. Амар М.И., Адам Шама И.Ю., Энайя А.А., Хинд А.Е.О., Хагер А.М. Воздействие различных уровней пероральных доз дексаметазона (Аль-Нагма), используемых суданскими женщинами в качестве косметического средства, на крыс линии Вистар. J. Med. Sci. 2013. 13 (6): 432–438. [Google Scholar] 32. Динис-Оливейра Р.Дж., Дуарте Х.А., Ремиао Ф., Санчес-Наварро А., Бастос М.L, Carvalho F. Обработка однократной высокой дозой дексаметазона снижает патологический балл и увеличивает выживаемость крыс, отравленных паракватом. Токсикология. 2006. 227 (1-2): 73–85. [PubMed] [Google Scholar] 33. Сингх А., Бхат Т.К., Шарма О.П. Клиническая биохимия гепатотоксичности. J. Clin. Toxicol. 2011; 1 (4): 1–19. [Google Scholar] 34. Thapa B, Walia A. Функциональные пробы печени и их интерпретация. Индийский J. Pediatr. 2007. 74 (7): 663–671. [PubMed] [Google Scholar] 35. Lv Z.P, Peng Y.Z, Zhang B.B, Fan H, Liu D, Guo Y.М. Нарушения обмена глюкозы и липидов у цыплят с окислительным стрессом, вызванным дексаметазоном. J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. 2018; 102 (2): 706–717. [PubMed] [Google Scholar] 36. Пирро А.С., Лензи Х.Л., Рамос Дж. А., Моура-Нето Р., Кашем Ф. К. О., Да Силва С. С., Такия С. М., Гаттасс С. Р. Лечение дексаметазоном улучшает морфологические и гематологические параметры хронического экспериментального шистосомоза. Паразитол. Res. 2004. 92 (6): 478–483. [PubMed] [Google Scholar] 37. Экен Х., Озтюрк Х., Озтюрк Х., Бююкбайрам Х.Дозозависимые эффекты дексаметазона на повреждение печени из-за перевязки желчных протоков у крыс. Мир J. Gastroenterol. 2006; 12 (33): 5379. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 38. Dołowy M, Pyka-Pająk A, Filip K, Joanna Z. Утвержденный ТСХ-денситометрический метод определения местеролона в сыпучих материалах и в таблетках. Биомед. Res. Инт 2015. 2015: 230104. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 39. Кумар С., Джотирмайи К., Саранги М. Тонкослойная хроматография: инструмент биотехнологии для выделения биологически активных соединений из лекарственных растений.Int. J. Pharm. Sci. Rev. Res. 2013. 18 (1): 126–132. [Google Scholar]

Влияние стимуляторов роста стероидов на морфологические и биохимические адаптации печени бройлеров

Vet World. 2020 ноя; 13 (11): 2330–2337.

Насрин Султана

1 Кафедра анатомии и гистологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

Марсия Афросе

1 desh Кафедра анатомии и гистологии, факультет ветеринарии Бангладеш , Мименсингх, Бангладеш

Кази Рафик

2 Кафедра фармакологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

1 Кафедра анатомии и гистологии, Факультет ветеринарных наук Бангладеш, Бангладешский сельскохозяйственный университет , Бангладеш

2 Кафедра фармакологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

Поступила в редакцию 14 июня 2020 г .; Принята в печать 29 сентября 2020 г.

Открытый доступ. Эта статья распространяется в соответствии с условиями Международной лицензии Creative Commons Attribution 4.0 (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/), которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии, что вы укажете соответствующую ссылку. оригинальному автору (ам) и источнику, дайте ссылку на лицензию Creative Commons и укажите, были ли внесены изменения. Отказ от лицензии Creative Commons Public Domain Dedication (http://creativecommons.org/publicdomain/zero/1.0 /) применяется к данным, представленным в этой статье, если не указано иное.

Abstract

Цель:

Исследование было проведено для наблюдения за влиянием дексаметазона (DEX) на общее исследование и гистоморфометрию печени, а также на изменения биохимических параметров бройлеров.

Материалы и методы:

Девяностодневных цыплят были собраны и распределены в одну из трех групп: контрольная, группа A и группа B. Контрольная группа, группа A и группа B кормились в течение 28 дней домашним животным. рацион, коммерческий рацион для бройлеров и домашний рацион с DEX (7 мг / кг корма), соответственно.Образцы печени собирали у отдельных птиц после умерщвления на 7, 14, 21 и 28 дни эксперимента. Изучены морфометрические характеристики (длина, вес, цвет, текстура) печени. Гистоморфологические изменения печени оценивали с помощью стандартного окрашивания гематоксилином и эозином. Для измерения биохимических показателей образцы крови отбирали на 7, 14, 21 и 28 дни эксперимента. Функциональный тест печени проводился спектрофотометрически путем анализа биохимических маркеров сыворотки крови, то есть аланинаминотрансферазы (АЛТ), аспартатаминотрансферазы и щелочной фосфатазы (ЩФ).Для обнаружения печеночных стероидов выполняли тонкослойную хроматографию (ТСХ).

Результаты:

Геморрагия и гиперемия печени были обнаружены у бройлеров группы B. Не было обнаружено значительных изменений в весе и длине печени; У птиц группы B наблюдалось только численное уменьшение веса и длины. Ширина печени увеличилась в группе B на 21 день. Гистологическое исследование печени показало накопление липидных капель, скопление синусоидов и центральных вен у бройлеров группы B.Биохимические анализы показали повышенные уровни ALT в группе B по сравнению с группой A на 14 день эксперимента. Оценка ТСХ показала положительный результат в группе В на 28 день эксперимента.

Заключение:

Результаты настоящего исследования показывают, что DEX может изменять морфологию печени и концентрацию АЛТ в циркуляции бройлеров.

Ключевые слова: бройлер, дексаметазон, стимулятор роста, печень

Введение

В настоящее время птицеводство становится ведущей отраслью сельского хозяйства Бангладеш.В течение последних двух десятилетий этот сектор рос примерно на 35% в год [1]. Эта отрасль обладает огромным потенциалом для ускорения экономического роста страны, а также обеспечения продовольственной безопасности. Совместное исследование IFPRI / FAO / ILRI показало, что мировое производство и потребление мяса будет продолжать расти с 233 миллионов метрических тонн (МТ) в 2000 году до 300 миллионов МТ в 2020 году, при этом производство мяса птицы увеличится с 9 МТ в 1960 году. до 68 тонн в 2000 г. из-за увеличения национального спроса [2].Это привело к открытию и широкому использованию ряда «стимуляторов роста (GP)». ГП добавляются в рацион с целью повышения продуктивности животных за счет увеличения скорости роста, повышения эффективности преобразования корма, увеличения выживаемости и снижения смертности домашней птицы [3]. Кроме того, терапевты становятся все более популярными в качестве кормовых добавок из-за их благоприятного воздействия на здоровье кишечника и иммунитет [4,5].

Глюкокортикоиды (ГК) — стероидные гормоны, содержащие как природные, так и синтетические производные [6].Из коры надпочечников разных видов выделено более 50 стероидов [7]. Только несколько стероидов в первую очередь ответственны за влияние коры надпочечников на углеводный, белковый и жировой обмен. Таким образом, эффекты, опосредованные ГК, включают, например, усиление глюконеогенеза, снижение периферической утилизации глюкозы, усиление антагонизма к инсулину, усиление катаболизма белков, снижение накопления жира и стимулированные противовоспалительные эффекты [8], включая уменьшение циркулирующих лимфоцитов, эозинофилов и фиксированных лимфоцитарные ткани и уменьшение местных воспалительных процессов [9].Дексаметазон (DEX) представляет собой синтетическое производное ГК, основное терапевтическое использование которого связано с его противовоспалительными и иммунодепрессивными свойствами [8]. Большая часть DEX, используемого в ветеринарии, предназначена для борьбы с воспалениями или аллергией. Таким образом, злоупотребление кортикостероидом в этой категории не является редкостью. В мясном скотоводстве DEX обычно используется для повышения показателей роста крупного рогатого скота [6,10,11]. Незаконное употребление стероидов GP в высоких дозах, то есть 7 мг / кг [12], и их остатки в пищевых продуктах могут негативно повлиять на умственное и физическое развитие детей и фертильность женщин, вызвать рак и повредить жизненно важные органы, такие как мозг, печень и т. Д. почки и сердце [13].Из-за этих проблем со здоровьем некоторые стероидные терапевты были запрещены к использованию у животных, производящих пищу, Европейским Союзом (ЕС) [14,15]. Чтобы защитить здоровье потребителей от любых потенциальных рисков, ЕС одобрил использование DEX в животноводстве только в терапевтических целях и установил соответствующие максимальные пределы остатков в тканях и молоке, предназначенном для потребления человеком (Совет Европейских сообществ 1990 г., Постановление Совета 90/2377 / EEC) [14].

Печень, самая большая железа в организме, используется для фильтрации вредных токсинов из крови и для синтеза витаминов и минералов.Это также важно для баланса уровней белков, холестерина и сахаров. Кроме того, печень используется для производства желчи, помогающей переваривать пищу. В общем, ГК могут вызывать подавление иммунитета, что приводит к неспецифическому росту бактерий, вирусов и паразитов в организме, а токсины этих микробов также могут вызывать повреждение печени. ГК являются ферментативными и термостойкими и обычно откладываются в печени [16], что приводит к гепатотоксичности. Из-за гепатотоксичности некоторые специфические для печени ферменты (аланинаминотрансфераза [ALT], аспартатаминотрансфераза [AST] и щелочная фосфатаза [ALP]) могут выделяться в кровь.В общем, повышенные концентрации циркулирующих ферментов являются показателями острого поражения органа, а не снижения функции органа. Повышение концентрации АСТ и АЛТ в плазме является наиболее специфическим индикатором повреждения клеток печени [17].

Настоящее исследование направлено на изучение гистоморфологии печени и изменений биохимических параметров крови бройлеров в ответ на стероид GP DEX.

Материалы и методы

Этическое разрешение

Все процедуры обращения с животными соответствовали правилам ухода и использования, установленным Комитетом по благополучию животных и этике экспериментов, Сельскохозяйственный комитет Бангладеш, Мименсингх (AWEEC / BAU / 2019 [23]) .

Птицы и менеджмент

Настоящий эксперимент проводился в январе 2019 года на кафедре анатомии и гистологии Бангладешского сельскохозяйственного университета, Мименсингх-2202. Для эксперимента рассматривали девяностодневных цыплят (DOC) линии «Cobb 500». Их выращивали в помещении с контролируемой средой в течение 28 дней в экспериментальном сарае. Бройлеров кормили стандартным стартовым рационом и рационом откорма бройлеров на протяжении всего экспериментального периода.

Схема эксперимента

Всего 90 бройлеров DOC «Cobb 500» случайным образом были разделены на три равные группы (каждая n = 30): контрольная группа, группа A и группа B.Птицы контрольной группы, группы A и группы B выращивались на домашнем рационе бройлеров, коммерческом рационе бройлеров и домашнем рационе бройлеров с высокой дозой DEX, соответственно. Образцы крови из крыловой вены и образцы печени собирали на 7, 14, 21 и 28 дни экспериментального периода. Образцы печени были взяты в асептических условиях у каждого бройлера для общего наблюдения, гистологического исследования и тонкослойной хроматографии (ТСХ).

Опытный рацион

Птица контрольной группы выращивалась на домашнем рационе бройлеров.Бройлеры группы А были выращены на бройлерном рационе коммерческого типа. Бройлеры группы B выращивались на домашнем рационе бройлеров, включающем высокую дозу добавки DEX (7,0 мг / кг массы тела) в корме. Коммерческий рацион был привезен компанией Nourish Poultry and Hatchery Ltd., Бангладеш. Домашний рацион был составлен в соответствии с ингредиентами коммерческого рациона (). Каждый ингредиент рациона готовился отдельно, а затем смешивался с домашним рационом.

Таблица-1

Кормовые ингредиенты и химический состав рациона.

3

9008,00 кг 900
Состав Предстартерный бройлер Стартовый бройлер Бройлер откормочный
Кукуруза 43,00 кг 40,32 кг 43,64 кг
90,00 90,00 Пшеница 10,00 кг 10,00 кг
Рисовая полироль 4,00 кг 8.00 кг 10,00 кг
Соя 26,00 кг 29,00 кг 22,50 кг
Мясно-костная мука 9,00 кг 897yster 900 1,00 кг 1,00 кг 1,00 кг
Соль 300 г 300 кг 250 г
Метионин 200 г 18088 900 900 30 г 30 г 30 г
Витаминный премикс (бройлер) 250 г 250 г 250 г
Кормовой фермент
Соевое масло 6.5 кг 3,5 кг 4,0 кг
DCP 2,50 кг 2,50 кг
Хлорид холина 100 г 100 г

100,00 кг 100,00 кг 100,00 кг

Общее исследование

При общем исследовании учитывались такие параметры, как цвет, длина и вес. Цвет печени сравнивали в контрольной и опытной группах путем визуального наблюдения.Длина и ширина печени у разных групп измеряли по градуированной шкале.

Гистология печени

Образцы печени были быстро удалены и сохранены в 10% нейтральном забуференном формалине. После 24-часового периода фиксации ткани обезвоживали, а затем заливали парафином. Парафиновые блоки разрезали на срезы толщиной 6 мкм с помощью скользящего микротома (MIC 509, Euromex, Япония). Образцы помещали на предметные стекла, сушили в течение ночи, а затем окрашивали гематоксилином и эозином для определения морфологических изменений.

Биохимические исследования

Пять миллилитров крови были собраны без антикоагулянта в стерильные стеклянные пробирки. Пробирки с кровью помещали в наклонное положение при комнатной температуре для свертывания. Затем пробирки помещали в холодильник на ночь при 4 ° C. Кровь центрифугировали при 1000 об / мин в течение 15 мин для сбора сыворотки. Затем сыворотку хранили во флаконе с завинчивающейся крышкой и хранили при -20 ° C до дальнейшего использования. Измерение биохимических показателей проводили спектрофотометром на анализаторе Humalyzer 2000 (Wiesbaden, Германия).

TLC

Образцы печени на 28 день из различных экспериментальных групп были рассмотрены для качественного тестирования. Сначала образцы смешивали с помощью ступки и пестика. Затем добавляли PBS (pH 6,5) и образцы гомогенизировали с помощью вихревой машины (Vortex-XHC, Wincom, Китай). После этого добавляли 30% трихлоруксусную кислоту и смесь центрифугировали (Hettich D-78532, Германия) при 6000 об / мин в течение 20 минут. Затем супернатант жидкости переносили в пробирку Сокола с равным количеством диэтилового эфира и собирали нижний слой во флакон с завинчивающейся крышкой.Карандашом была сделана тонкая отметка внизу пластинки для ТСХ, чтобы нанести пятна образца. Затем образцы растворов наносили на отмеченные на линии пятна на равных расстояниях. Подвижную фазу заливали в камеру для ТСХ до ровной выемки на несколько сантиметров выше дна камеры. Смоченную фильтровальную бумагу в подвижной фазе помещали на внутреннюю стенку камеры для поддержания равной влажности. Пластину, приготовленную с пятнами образца, затем помещали в камеру для ТСХ так, чтобы сторона пластины с линией образца была обращена к подвижной фазе, и камеру закрывали крышкой.Планшет погружали так, чтобы пятна образца находились значительно выше уровня подвижной фазы для проявления. Планшеты удаляли и давали высохнуть при комнатной температуре. Пятна образца детектировали в подходящей камере УФ-излучения.

Статистический анализ

Данные, полученные при измерении веса, длины и ширины печени, а также биохимических параметров (АЛТ, АСТ и ЩФ), были проанализированы с использованием процедуры повторных измерений в Статистическом пакете программного обеспечения социальных наук версии 19. (IBM Corp., Нью-Йорк, США). Различия между средними были выявлены с помощью множественных тестов Дункана. Уровень значимости был установлен на уровне p <0,05.

Результаты

Общее наблюдение

Общий вид печени

В печени бройлеров контрольной группы серьезных изменений не наблюдалось. Было обнаружено, что цвет печени был красноватым в контрольной группе, тогда как он был бледным у бройлеров группы А. Застой был обнаружен в печени бройлеров группы А на 21 и 28 дни эксперимента ().И геморрагическая, и перегруженная печень были обнаружены у бройлеров группы B () на 14, 21 и 28 дни эксперимента.

Репрезентативные изображения общего наблюдения за печенью различных групп бройлеров. Нормальный внешний вид печени в контрольной группе (а), застойная (черная стрелка) печень в группе A (b), а также застойная (c) и геморрагическая (d) печень наблюдались в группе, получавшей дексаметазон, то есть в группе B

Масса печени

Средняя масса печени в контрольной группе, группе A и группе B на 7-й день составляла 3.63 ± 0,24 г, 3,33 ± 0,42 г и 5,25 ± 1,59 г соответственно (). На 14 день наибольший вес наблюдался в группе А (9,25 ± 0,25 г) по сравнению с контрольной группой (7,3 ± 2,23 г) и группой В (6,55 ± 2,21 г). На 21 день эксперимента самый низкий вес печени был зарегистрирован в группе B (14,75 ± 3,75 г) по сравнению с группой A (28,75 ± 1,93 г). Средний вес печени в контрольной группе, группе A и группе B на 28 день составлял 31,25 ± 3,94 г, 32 ± 2,68 г и 29,25 ± 6,54 г соответственно.

Масса печени бройлеров в разных опытных группах в разные дни опытного периода.

Длина печени

Длина печени указана в. Существенных различий между разными группами цыплят-бройлеров не наблюдалось. Только численное уменьшение длины печени бройлеров группы В наблюдалось на 14 и 21 день эксперимента.

Длина печени в разных опытных группах бройлеров в разные дни экспериментального периода (Среднее ± стандартная ошибка).

Ширина печени

Ширина печени трех опытных групп представлена ​​в.Мы наблюдали более высокие средние значения у бройлеров группы B на 21 день эксперимента по сравнению с контролем и группой A.

Ширина печени (среднее ± стандартная ошибка) у бройлеров разных экспериментальных групп в разные дни эксперимента. Различные буквы в качестве надстрочного индекса указывают на существенные различия между разными группами экспериментов.

Гистологическое наблюдение

Печень контрольной группы была обнаружена с нормальной гистологической архитектурой во все временные точки (). На 21-й и 28-й дни застойные явления в синусоидах и центральной вене были обнаружены в участках печени в группе A (), тогда как в эти моменты времени в группе B наблюдались застойные явления в центральной вене и синусоидах, а также скопление жировых капель. (Цифры- а).

Микрографические изображения срезов печени в контрольной группе (10 × и 40 ×). Печень показывает нормальную гистологическую архитектуру (Xa и Xb) (H и E). CV = Центральная вена; S = синусоиды; H = гепатоциты.

Микрографические изображения срезов печени бройлеров группы А (10 × и 40 ×). Группа A демонстрирует синусоидальный застой (Ya), расширенную и перегруженную центральную вену (Yb) на 21 и 28 день срезов печени (H и E). CCV = застойная центральная вена; CS = скопление синусоид.

Фотомикрографические наблюдения срезов печени в группе B (10 ×, 40 ×). Группа B показывает расширенную и перегруженную центральную вену (Za) и перегруженные синусоиды (белая стрелка) (Zb) на 21 и 28 день срезов печени (H и E). CCV = Застой в центральной вене; CS = скопление синусоидов; H = гепатоциты.

Микрографические изображения срезов печени в группе B (10 ×, 40 ×). Капли липидов (черная стрелка) были замечены в срезах печени (Zc) на 28 день в группе B (H и E). CV = Центральная вена; LP = липидные капли.

Биохимический анализ

В настоящем исследовании функциональный тест печени проводился путем измерения сывороточного уровня трех различных биохимических параметров, то есть АЛТ, АСТ и ЩФ, в трех экспериментальных группах на 7, 14, 21 и 28 дни. (). Уровень АЛТ был значительно увеличен в сыворотке группы В на 14 день по сравнению с группой А, тогда как уровень АСТ и ЩФ оставался неизменным у бройлеров всех групп.

(a-c) Влияние стероидного стимулятора роста на измерение ферментов печени в сыворотке различных групп бройлеров (Среднее ± SE).Различные буквы в качестве надстрочного индекса указывают на существенные различия между разными группами экспериментов.

ТСХ

ТСХ — это твердо-жидкостная хроматография, которую можно использовать для проверки идентичности вещества. В образцах печени качественная идентификация DEX была проведена с помощью ТСХ (). Положительным контролем была группа, получавшая DEX, то есть Группа B; отрицательные результаты были получены в контрольной группе и в группе А, которая поддерживалась коммерческим рационом для бройлеров, показав положительные результаты по сравнению с группой В.

Качественная идентификация стероидных веществ производилась методом тонкослойной хроматографии.

Обсуждение

В настоящем исследовании бройлерам скармливали высокие дозы DEX для наблюдения за влиянием GC на грубые и морфологические изменения печени и на изменения биохимических параметров в сыворотке.

Масса тела

Масса тела бройлеров в группе, получавшей DEX, была снижена по сравнению с контрольной группой и группой А в том же эксперименте, проведенном нашей группой [12].Согласно литературным данным [18], DEX может повышать уровень Т3 в плазме и стимулировать метаболические пути в мышцах, которые ответственны за мышечную дистрофию. Группа ученых [19] заявила, что хроническое употребление кортикостероидов в рационе может стимулировать катаболизм белков, что может подавить набор массы тела и снизить потребление корма цыплятами-бройлерами.

Общее наблюдение за печенью

Печень контрольной группы имела красноватый цвет, тогда как в печени групп A и B.Точечные геморрагические поражения были обнаружены у бройлеров группы B. Аналогичные результаты были также получены Даттани и Брук [7] и утверждали, что застойные явления могут возникать из-за микронодулярного цирроза печени.

В настоящем исследовании самый низкий вес печени был зарегистрирован в группе B. Однако вес печени увеличивался с увеличением возраста бройлеров, что в соответствии с результатами, представленными в Cai et al . [20]. Сообщалось, что доля печени (в% от массы тела) цыплят с инъекцией DEX увеличивается на 34% по сравнению с контролем и на 39% у цыплят, получавших парное вскармливание.Другие исследования также наблюдали заметное увеличение массы печени при лечении кортикостероном (КОРТ) [21-24]. Вероятно, что увеличение массы печени может быть вызвано усиленным синтезом жирных кислот и центральными жировыми отложениями в ответе печени на высокие уровни циркулирующего CORT [25,26]. Результаты по весу печени, полученные в нашем исследовании, противоречат результатам другого исследования, проведенного группой исследователей [27]. Относительная и фактическая масса печени была значительно выше у кур, получавших DEX.

Гистоморфологические наблюдения

В печени контрольной группы наблюдалась нормальная гистологическая архитектура. Однако в группе A были обнаружены застойные центральные вены и синусоиды. В группе B застой наблюдался в центральной вене и синусоидах печени на 21 и 28 дни экспериментального периода. Накопление липидных капель также наблюдалось на 28 день в группе B. Сходные результаты были получены и другими группами [28–31], утверждающими, что хроническое повышение уровня GC может быть связано с повышенным включением жира в печени.ГК стимулируют глюконеогенез в печени и увеличивают синтез и хранение гликогена в печени [30]. В ответ на повышенный уровень глюкозы в крови может наблюдаться компенсаторное увеличение секреции инсулина. Лечение DEX может вызывать зависящие от времени изменения уровней глюкозы и инсулина и увеличение секреции инсулина, что приводит к отложению большего количества гликогена в цитоплазме гепатоцитов с течением времени. Группа исследователей [32] наблюдала небольшую цитоплазматическую вакуолизацию, идентифицированную как липидные капли, затрагивающую несколько гепатоцитов.Кроме того, наблюдалась широкая вакуолизация цитоплазмы в результате внутриклеточного отека и накопления липидов. DEX подавляет синтез арахидоновой кислоты и простагландина, которые обычно действуют как антиагрегантные агенты [30]. Это, вместе с вероятным возникновением гипертонии и полицитемии в печени, могло вызвать расширение и застой синусоид, которые были замечены в группе, получавшей DEX в настоящем исследовании.

Биохимические параметры

Повышение уровня АЛТ, АСТ и ЩФ в сыворотке и тканях является наиболее частым признаком заболеваний печени [17].В настоящем исследовании уровень АЛТ был значительно увеличен в сыворотке группы В на 14 день эксперимента по сравнению с группой А. Повышенный уровень фермента АЛТ, высвобождаемый в кровь, может быть связан с повреждением печени, учитывая, что АЛТ является специфическим. при гепатоцитарном некрозе [33,34].

В настоящем исследовании сывороточные уровни AST и ALP в группах A и B существенно не отличались от контрольной группы. Было показано, что обработка DEX может повышать уровни ALT и AST в сыворотке крови бройлеров в возрасте 3 недель; однако достоверной разницы в значениях АЛТ и АСТ на 4, 5 и 6 неделях не было [35].Аналогичное сообщение было найдено в другом исследовании [36]. Эти результаты по ALT и AST соответствуют результатам настоящего исследования. В другом исследовании было замечено, что сывороточные уровни ALP, AST и ALT могут быть снижены у крыс с низкими и высокими дозами DEX с перевязкой желчных протоков из-за холестаза или диффузного повреждения печени [37]. Они объяснили, что это изменение может быть связано с холестазом или диффузным поражением печени.

Метод скрининга

Поскольку ТСХ оказалась успешным методом скрининга для оценки остатков кортикостероидов в тканях разных видов [9,38], мы выбрали тот же метод для обнаружения присутствия DEX в наших образцах.Группа B, которая получала домашнюю диету с DEX, показала положительный результат в отношении остатков DEX в печени по наличию пятен на хроматографической пластине. Аналогичное наблюдение было сделано другой исследовательской группой [39], где образцы тканей анализировались путем попадания на пластину ультрафиолетового света. Как и предполагалось, образцы бройлеров контрольной группы и группы А показали отрицательный результат. Настоящее исследование показывает, что DEX может откладываться в печени бройлеров в ответ на экзогенный GC DEX.

Заключение

При общем наблюдении мы наблюдали постоянный вес печени у разных групп бройлеров во время эксперимента, за исключением небольшого снижения в группе B.Наблюдалось только численное уменьшение длины печени группы B, тогда как ширина печени увеличивалась в этой группе. Застойная и геморрагическая печень наблюдалась в группе B. Нормальная морфология печени была обнаружена в контрольной группе, тогда как застойные центральные вены и синусоиды наблюдались в группах A и B. Липидные капли накапливались в срезах печени бройлеров группы B на 28 день. Уровень АЛТ был значительно повышен в сыворотке группы В. Уровень АСТ и ЩФ не изменился у бройлеров различных экспериментальных групп.Метод скрининга выявил присутствие DEX в тканях печени бройлеров, которым вводили DEX. Наконец, было обнаружено, что DEX изменяет рост и морфологию печени, а также концентрацию ALT в кровообращении цыплят-бройлеров. DEX может сбалансировать вес печени за счет увеличения ширины и уменьшения длины печени у бройлеров.

Вклад авторов

Н.С.: руководитель исследования, концептуализировал и разработал исследование, а также подготовил и отредактировал рукопись.МА: Провел эксперимент, сбор и анализ данных, составление рукописи. КР: Помогал в проведении эксперимента и сборе данных. Все авторы прочитали и одобрили окончательную версию рукописи.

Благодарности

Мы также хотели бы поблагодарить доктора Лауру Уэбб, Боннский университет, Германия, за вычитку рукописи. Доктор Насрин Султана получил исследовательский фонд (грант № 2018/337 / BAU) от Исследовательской системы Бангладешского сельскохозяйственного университета, BAU, Бангладеш.

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих интересов.

Примечание издателя

Veterinary World сохраняет нейтралитет в отношении юрисдикционных требований в отношении опубликованной институциональной принадлежности.

Ссылки

1. Хамид М., Рахман М., Ахмед С., Хоссейн К. Состояние птицеводства в Бангладеш и роль частного сектора в его развитии. Asian J. Poultry Sci. 2017; 11 (1): 1–13. [Google Scholar] 2. Спиди А.В. Мировое производство и потребление продуктов животного происхождения.Nutr. J. 2003; 133 (11): 4048S – 4053S. [PubMed] [Google Scholar] 3. Хасан М.Н., Мостофа М., Сорвар М.Г., Хасан М.Т., Дас К., Хоссай Д.М.Н. Влияние экстракта листьев тулси на прирост живой массы при выращивании бройлеров. Bangl. J. Vet. Med. 2016; 14 (1): 21–25. [Google Scholar] 5. Даш П.К., Верма С.В., Нахаптра К.М. В. Гопал. Отклик бройлеров на определенные характеристики производительности. Indian J. Pharm. Sci. 1992. 27 (3): 103–115. [Google Scholar] 6. Cantiello M, Giantin M, Carletti M, Lopparelli R.M, Capolongo F, Lasserre F, ollo E, Nebbia C, Martin P.Г.П., Пино Т., Дакасто М. Эффекты дексаметазона, вводимого для стимуляции роста, на экспрессию печеночного цитохрома P450 3A у теленка. Biochem. Pharmacol. 2009. 77 (3): 451–463. [PubMed] [Google Scholar] 7. Даттани М.Т., Брук К.Г.Д. Клиническая детская эндокринология Брука. США: Wiley-Blackwell; 2019. стр. 350. [Google Scholar] 8. Watteyn A, Wyns H, Plessers E, Russo E, De Baere S, De Backer P, Croubels P. Фармакокинетика дексаметазона после внутривенного и внутримышечного введения цыплятам-бройлерам.Вет. J. 2013; 195 (2): 216–220. [PubMed] [Google Scholar] 9. Юань Y, Xu C, Peng C, Jin Z, Chen W, Liu L. Аналитические методы обнаружения остатков кортикостероидов в пищевых продуктах животного происхождения. Крит. Rev. Anal. Chem. 2008. 38 (4): 227–241. [Google Scholar] 10. Рейг М., Мора Л., Наварро Дж. Л., Толдра Ф. Метод хроматографии для скрининга и подтверждающего обнаружения дексаметазона. Meat Sci. 2006. 74 (4): 676–680. [PubMed] [Google Scholar] 11. Карраро Л., Феррарессо С., Кардаццо Б., Ромуальди К., Монтесисса С., Готтардо Ф., Патарнелло Т., Кастаньяро М., Барджеллони Л.Профили экспрессии скелетных мышц у молодых бычков, получавших стероидные стимуляторы роста. Physiol. Геномика. 2009. 38 (2): 138–148. [PubMed] [Google Scholar] 12. Афросе М., Султана Н., Ислам М.Р.Физиологические реакции кортикостероидов, дексаметазона у цыплят-бройлеров. Int. J. Sci. Res. 2018; 7 (12): 1459–1463. [Google Scholar] 13. Эльмаждуб А., Гарбадж А., Аболгаит С., Эль-Махмуди А. Оценка болденона как стимулятора роста бройлеров: аспекты безопасности и качества мяса. J. Food Drug Anal. 2016; 24 (2): 284–292.[PubMed] [Google Scholar] 14. Bozzetta E, Pezzolato M, Maurella C, Varello K, Richelmi G.B, Draisci R, erranti C, D’Angelo A, Caramelli M. Разработка усовершенствованного гистопатологического подхода для выявления незаконного обращения с низкими дозами дексаметазона у телят. Пищевая добавка. Contam. Часть A. 2011; 28 (9): 1187–1192. [PubMed] [Google Scholar] 15. Бьянкотто Дж., Стелла Р., Барруччи Ф., Лега Ф, Анджелетти Р. Концентрации стероидов в моче у быков при анаболическом лечении имплантатом revalor-XS®. J. Anal. Методы Chem 2016.2016: 8013175. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 16. Giantin M, Lopparelli RM, Zancanella V, Martin PG, Polizzi A, Gallina G, Gottardo F, Montesissa C, Ravarotto L, Pineau T, Dacasto M. Влияние незаконного дексаметазона на ферменты метаболизма печеночных лекарств и связанные факторы транскрипции мРНК и их потенциал использовать в качестве биомаркеров у крупного рогатого скота. J. Agric. Food Chem. 2009. 58 (2): 1342–1349. [PubMed] [Google Scholar] 17. Каммон А.М., Брар Р.С., Банга Х.С., Соди С. Патолого-биохимические исследования гепатотоксичности и нефротоксичности при воздействии хлорпирифоса и имидаклоприда у кур-несушек.Вет. Архив. 2010. 80 (5): 663–672. [Google Scholar] 18. Aengwanich W. Влияние дексаметазона на физиологические изменения и продуктивность бройлеров. Азиатская J. Anim. Вет. Adv. 2007. 32 (2): 157–161. [Google Scholar] 19. Хаяси К., Нагай Ю., Оцука А., Томита Ю. Влияние диетического кортикостерона и трилостана на рост и обмен белка в скелетных мышцах петушков-бройлеров. Br. Пульт. Sci. 1994. 35 (5): 789–798. [PubMed] [Google Scholar] 20. Cai Y, Song Z, Zhang X, Wang X, Jiao H, Lin H. Повышенный de novo липогенез в печени способствует усиленному отложению жира у цыплят-бройлеров, подвергшихся воздействию дексаметазона ( Gallus gallus domesticus) Comp.Biochem. Physiol. Часть CToxicol. Pharmacol. 2009. 150 (2): 164–169. [PubMed] [Google Scholar] 21. Донг Х., Лин Х., Цзяо Х., Сун З., Чжао Дж., Цзян К. Изменение развития и метаболизма белков в скелетных мышцах цыплят-бройлеров ( Gallus gallus domesticus) кортикостероном. Комп. Biochem. Physiol. Мол. Интегр. Physiol. 2007. 147 (1): 189–195. [PubMed] [Google Scholar] 22. Feng Y, Hu Y, Hou Z, Sun Q, Jia Y, Zhao R. Хроническое воздействие кортикостерона вызывает воспаление и фиброз печени в сочетании с m 6 А-связанное посттранскрипционное подавление белков теплового шока у цыплят.Шапероны клеточного стресса. 2020; 25 (5): 47–56. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 23. Паролини М., Поссенти К.Д., Секоманди С., Карбони С., Каприоли М., Руболини Д., Романо А, Саино Н. Пренатальные независимые и комбинированные эффекты витамина Е и кортикостерона в желтке на рост эмбриона и окислительный статус у желтоногой чайки. J. Exp. Биол. 2019; 222 (10): jeb199265. [PubMed] [Google Scholar] 24. Ким И, Ким Дж, Юн Х, Чой Й. Влияние диетического кортикостерона на цвет желтка и качество яичной скорлупы у кур-несушек.Anim. Biosci. 2015; 28 (6): 840–846. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 25. Данфорд Э.С., Ридделл М.С. Метаболические последствия глюкокортикоидов при диете с высоким содержанием жиров и противодействие физическим упражнениям. Метаболиты. 2016; 6 (4): 44. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 26. Линь Х, Суй С., Цзяо Х, Буйсе Дж, Декюпере Э. Нарушение развития цыплят-бройлеров из-за стресса, имитируемого воздействием кортикостерона. Комп. Biochem. Physiol. B Biochem. Мол. Биол. 2006. 143 (3): 400–405. [PubMed] [Google Scholar] 27.Цай Й, Сонг З., Ван Х, Цзяо Х., Линь Х. Дексаметазон-индуцированный липогенез печени у цыплят ( Gallus gallus domesticus) является инсулинозависимым. Стресс. 2011. 14 (3): 273–281. [PubMed] [Google Scholar] 28. Харви I, Стивенсон Э. Дж., Редд Дж. Р., Транкс К. Т., Хохберг И., Bridges N.Q.D. Нарушения метаболизма, вызванные глюкокортикоидами, усугубляются при ожирении. BioRxiv 2017.09.06. 2017: 184507. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 29. Ду В.В., Лю Ф., Шан С.В., Ма Х.С., Гупта С., Джин Т., Спанер Д., Крылов С.N, Zhang Y, Ling W, Yang B.B. Ингибирование индуцированного дексаметазоном развития жировой дистрофии печени путем снижения уровней mir-17-5p. Мол. Ther. Нуклеиновых кислот. 2015; 23 (7): 1222–1233. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 31. Амар М.И., Адам Шама И.Ю., Энайя А.А., Хинд А.Е.О., Хагер А.М. Воздействие различных уровней пероральных доз дексаметазона (Аль-Нагма), используемых суданскими женщинами в качестве косметического средства, на крыс линии Вистар. J. Med. Sci. 2013. 13 (6): 432–438. [Google Scholar] 32. Динис-Оливейра Р.Дж., Дуарте Х.А., Ремиао Ф., Санчес-Наварро А., Бастос М.L, Carvalho F. Обработка однократной высокой дозой дексаметазона снижает патологический балл и увеличивает выживаемость крыс, отравленных паракватом. Токсикология. 2006. 227 (1-2): 73–85. [PubMed] [Google Scholar] 33. Сингх А., Бхат Т.К., Шарма О.П. Клиническая биохимия гепатотоксичности. J. Clin. Toxicol. 2011; 1 (4): 1–19. [Google Scholar] 34. Thapa B, Walia A. Функциональные пробы печени и их интерпретация. Индийский J. Pediatr. 2007. 74 (7): 663–671. [PubMed] [Google Scholar] 35. Lv Z.P, Peng Y.Z, Zhang B.B, Fan H, Liu D, Guo Y.М. Нарушения обмена глюкозы и липидов у цыплят с окислительным стрессом, вызванным дексаметазоном. J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. 2018; 102 (2): 706–717. [PubMed] [Google Scholar] 36. Пирро А.С., Лензи Х.Л., Рамос Дж. А., Моура-Нето Р., Кашем Ф. К. О., Да Силва С. С., Такия С. М., Гаттасс С. Р. Лечение дексаметазоном улучшает морфологические и гематологические параметры хронического экспериментального шистосомоза. Паразитол. Res. 2004. 92 (6): 478–483. [PubMed] [Google Scholar] 37. Экен Х., Озтюрк Х., Озтюрк Х., Бююкбайрам Х.Дозозависимые эффекты дексаметазона на повреждение печени из-за перевязки желчных протоков у крыс. Мир J. Gastroenterol. 2006; 12 (33): 5379. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 38. Dołowy M, Pyka-Pająk A, Filip K, Joanna Z. Утвержденный ТСХ-денситометрический метод определения местеролона в сыпучих материалах и в таблетках. Биомед. Res. Инт 2015. 2015: 230104. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 39. Кумар С., Джотирмайи К., Саранги М. Тонкослойная хроматография: инструмент биотехнологии для выделения биологически активных соединений из лекарственных растений.Int. J. Pharm. Sci. Rev. Res. 2013. 18 (1): 126–132. [Google Scholar]

Влияние стимуляторов роста стероидов на морфологические и биохимические адаптации печени бройлеров

Vet World. 2020 ноя; 13 (11): 2330–2337.

Насрин Султана

1 Кафедра анатомии и гистологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

Марсия Афросе

1 desh Кафедра анатомии и гистологии, факультет ветеринарии Бангладеш , Мименсингх, Бангладеш

Кази Рафик

2 Кафедра фармакологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

1 Кафедра анатомии и гистологии, Факультет ветеринарных наук Бангладеш, Бангладешский сельскохозяйственный университет , Бангладеш

2 Кафедра фармакологии, Факультет ветеринарных наук, Бангладешский сельскохозяйственный университет, Мименсингх, Бангладеш

Поступила в редакцию 14 июня 2020 г .; Принята в печать 29 сентября 2020 г.

Открытый доступ. Эта статья распространяется в соответствии с условиями Международной лицензии Creative Commons Attribution 4.0 (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/), которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии, что вы укажете соответствующую ссылку. оригинальному автору (ам) и источнику, дайте ссылку на лицензию Creative Commons и укажите, были ли внесены изменения. Отказ от лицензии Creative Commons Public Domain Dedication (http://creativecommons.org/publicdomain/zero/1.0 /) применяется к данным, представленным в этой статье, если не указано иное.

Abstract

Цель:

Исследование было проведено для наблюдения за влиянием дексаметазона (DEX) на общее исследование и гистоморфометрию печени, а также на изменения биохимических параметров бройлеров.

Материалы и методы:

Девяностодневных цыплят были собраны и распределены в одну из трех групп: контрольная, группа A и группа B. Контрольная группа, группа A и группа B кормились в течение 28 дней домашним животным. рацион, коммерческий рацион для бройлеров и домашний рацион с DEX (7 мг / кг корма), соответственно.Образцы печени собирали у отдельных птиц после умерщвления на 7, 14, 21 и 28 дни эксперимента. Изучены морфометрические характеристики (длина, вес, цвет, текстура) печени. Гистоморфологические изменения печени оценивали с помощью стандартного окрашивания гематоксилином и эозином. Для измерения биохимических показателей образцы крови отбирали на 7, 14, 21 и 28 дни эксперимента. Функциональный тест печени проводился спектрофотометрически путем анализа биохимических маркеров сыворотки крови, то есть аланинаминотрансферазы (АЛТ), аспартатаминотрансферазы и щелочной фосфатазы (ЩФ).Для обнаружения печеночных стероидов выполняли тонкослойную хроматографию (ТСХ).

Результаты:

Геморрагия и гиперемия печени были обнаружены у бройлеров группы B. Не было обнаружено значительных изменений в весе и длине печени; У птиц группы B наблюдалось только численное уменьшение веса и длины. Ширина печени увеличилась в группе B на 21 день. Гистологическое исследование печени показало накопление липидных капель, скопление синусоидов и центральных вен у бройлеров группы B.Биохимические анализы показали повышенные уровни ALT в группе B по сравнению с группой A на 14 день эксперимента. Оценка ТСХ показала положительный результат в группе В на 28 день эксперимента.

Заключение:

Результаты настоящего исследования показывают, что DEX может изменять морфологию печени и концентрацию АЛТ в циркуляции бройлеров.

Ключевые слова: бройлер, дексаметазон, стимулятор роста, печень

Введение

В настоящее время птицеводство становится ведущей отраслью сельского хозяйства Бангладеш.В течение последних двух десятилетий этот сектор рос примерно на 35% в год [1]. Эта отрасль обладает огромным потенциалом для ускорения экономического роста страны, а также обеспечения продовольственной безопасности. Совместное исследование IFPRI / FAO / ILRI показало, что мировое производство и потребление мяса будет продолжать расти с 233 миллионов метрических тонн (МТ) в 2000 году до 300 миллионов МТ в 2020 году, при этом производство мяса птицы увеличится с 9 МТ в 1960 году. до 68 тонн в 2000 г. из-за увеличения национального спроса [2].Это привело к открытию и широкому использованию ряда «стимуляторов роста (GP)». ГП добавляются в рацион с целью повышения продуктивности животных за счет увеличения скорости роста, повышения эффективности преобразования корма, увеличения выживаемости и снижения смертности домашней птицы [3]. Кроме того, терапевты становятся все более популярными в качестве кормовых добавок из-за их благоприятного воздействия на здоровье кишечника и иммунитет [4,5].

Глюкокортикоиды (ГК) — стероидные гормоны, содержащие как природные, так и синтетические производные [6].Из коры надпочечников разных видов выделено более 50 стероидов [7]. Только несколько стероидов в первую очередь ответственны за влияние коры надпочечников на углеводный, белковый и жировой обмен. Таким образом, эффекты, опосредованные ГК, включают, например, усиление глюконеогенеза, снижение периферической утилизации глюкозы, усиление антагонизма к инсулину, усиление катаболизма белков, снижение накопления жира и стимулированные противовоспалительные эффекты [8], включая уменьшение циркулирующих лимфоцитов, эозинофилов и фиксированных лимфоцитарные ткани и уменьшение местных воспалительных процессов [9].Дексаметазон (DEX) представляет собой синтетическое производное ГК, основное терапевтическое использование которого связано с его противовоспалительными и иммунодепрессивными свойствами [8]. Большая часть DEX, используемого в ветеринарии, предназначена для борьбы с воспалениями или аллергией. Таким образом, злоупотребление кортикостероидом в этой категории не является редкостью. В мясном скотоводстве DEX обычно используется для повышения показателей роста крупного рогатого скота [6,10,11]. Незаконное употребление стероидов GP в высоких дозах, то есть 7 мг / кг [12], и их остатки в пищевых продуктах могут негативно повлиять на умственное и физическое развитие детей и фертильность женщин, вызвать рак и повредить жизненно важные органы, такие как мозг, печень и т. Д. почки и сердце [13].Из-за этих проблем со здоровьем некоторые стероидные терапевты были запрещены к использованию у животных, производящих пищу, Европейским Союзом (ЕС) [14,15]. Чтобы защитить здоровье потребителей от любых потенциальных рисков, ЕС одобрил использование DEX в животноводстве только в терапевтических целях и установил соответствующие максимальные пределы остатков в тканях и молоке, предназначенном для потребления человеком (Совет Европейских сообществ 1990 г., Постановление Совета 90/2377 / EEC) [14].

Печень, самая большая железа в организме, используется для фильтрации вредных токсинов из крови и для синтеза витаминов и минералов.Это также важно для баланса уровней белков, холестерина и сахаров. Кроме того, печень используется для производства желчи, помогающей переваривать пищу. В общем, ГК могут вызывать подавление иммунитета, что приводит к неспецифическому росту бактерий, вирусов и паразитов в организме, а токсины этих микробов также могут вызывать повреждение печени. ГК являются ферментативными и термостойкими и обычно откладываются в печени [16], что приводит к гепатотоксичности. Из-за гепатотоксичности некоторые специфические для печени ферменты (аланинаминотрансфераза [ALT], аспартатаминотрансфераза [AST] и щелочная фосфатаза [ALP]) могут выделяться в кровь.В общем, повышенные концентрации циркулирующих ферментов являются показателями острого поражения органа, а не снижения функции органа. Повышение концентрации АСТ и АЛТ в плазме является наиболее специфическим индикатором повреждения клеток печени [17].

Настоящее исследование направлено на изучение гистоморфологии печени и изменений биохимических параметров крови бройлеров в ответ на стероид GP DEX.

Материалы и методы

Этическое разрешение

Все процедуры обращения с животными соответствовали правилам ухода и использования, установленным Комитетом по благополучию животных и этике экспериментов, Сельскохозяйственный комитет Бангладеш, Мименсингх (AWEEC / BAU / 2019 [23]) .

Птицы и менеджмент

Настоящий эксперимент проводился в январе 2019 года на кафедре анатомии и гистологии Бангладешского сельскохозяйственного университета, Мименсингх-2202. Для эксперимента рассматривали девяностодневных цыплят (DOC) линии «Cobb 500». Их выращивали в помещении с контролируемой средой в течение 28 дней в экспериментальном сарае. Бройлеров кормили стандартным стартовым рационом и рационом откорма бройлеров на протяжении всего экспериментального периода.

Схема эксперимента

Всего 90 бройлеров DOC «Cobb 500» случайным образом были разделены на три равные группы (каждая n = 30): контрольная группа, группа A и группа B.Птицы контрольной группы, группы A и группы B выращивались на домашнем рационе бройлеров, коммерческом рационе бройлеров и домашнем рационе бройлеров с высокой дозой DEX, соответственно. Образцы крови из крыловой вены и образцы печени собирали на 7, 14, 21 и 28 дни экспериментального периода. Образцы печени были взяты в асептических условиях у каждого бройлера для общего наблюдения, гистологического исследования и тонкослойной хроматографии (ТСХ).

Опытный рацион

Птица контрольной группы выращивалась на домашнем рационе бройлеров.Бройлеры группы А были выращены на бройлерном рационе коммерческого типа. Бройлеры группы B выращивались на домашнем рационе бройлеров, включающем высокую дозу добавки DEX (7,0 мг / кг массы тела) в корме. Коммерческий рацион был привезен компанией Nourish Poultry and Hatchery Ltd., Бангладеш. Домашний рацион был составлен в соответствии с ингредиентами коммерческого рациона (). Каждый ингредиент рациона готовился отдельно, а затем смешивался с домашним рационом.

Таблица-1

Кормовые ингредиенты и химический состав рациона.

3

9008,00 кг 900
Состав Предстартерный бройлер Стартовый бройлер Бройлер откормочный
Кукуруза 43,00 кг 40,32 кг 43,64 кг
90,00 90,00 Пшеница 10,00 кг 10,00 кг
Рисовая полироль 4,00 кг 8.00 кг 10,00 кг
Соя 26,00 кг 29,00 кг 22,50 кг
Мясно-костная мука 9,00 кг 897yster 900 1,00 кг 1,00 кг 1,00 кг
Соль 300 г 300 кг 250 г
Метионин 200 г 18088 900 900 30 г 30 г 30 г
Витаминный премикс (бройлер) 250 г 250 г 250 г
Кормовой фермент
Соевое масло 6.5 кг 3,5 кг 4,0 кг
DCP 2,50 кг 2,50 кг
Хлорид холина 100 г 100 г

100,00 кг 100,00 кг 100,00 кг

Общее исследование

При общем исследовании учитывались такие параметры, как цвет, длина и вес. Цвет печени сравнивали в контрольной и опытной группах путем визуального наблюдения.Длина и ширина печени у разных групп измеряли по градуированной шкале.

Гистология печени

Образцы печени были быстро удалены и сохранены в 10% нейтральном забуференном формалине. После 24-часового периода фиксации ткани обезвоживали, а затем заливали парафином. Парафиновые блоки разрезали на срезы толщиной 6 мкм с помощью скользящего микротома (MIC 509, Euromex, Япония). Образцы помещали на предметные стекла, сушили в течение ночи, а затем окрашивали гематоксилином и эозином для определения морфологических изменений.

Биохимические исследования

Пять миллилитров крови были собраны без антикоагулянта в стерильные стеклянные пробирки. Пробирки с кровью помещали в наклонное положение при комнатной температуре для свертывания. Затем пробирки помещали в холодильник на ночь при 4 ° C. Кровь центрифугировали при 1000 об / мин в течение 15 мин для сбора сыворотки. Затем сыворотку хранили во флаконе с завинчивающейся крышкой и хранили при -20 ° C до дальнейшего использования. Измерение биохимических показателей проводили спектрофотометром на анализаторе Humalyzer 2000 (Wiesbaden, Германия).

TLC

Образцы печени на 28 день из различных экспериментальных групп были рассмотрены для качественного тестирования. Сначала образцы смешивали с помощью ступки и пестика. Затем добавляли PBS (pH 6,5) и образцы гомогенизировали с помощью вихревой машины (Vortex-XHC, Wincom, Китай). После этого добавляли 30% трихлоруксусную кислоту и смесь центрифугировали (Hettich D-78532, Германия) при 6000 об / мин в течение 20 минут. Затем супернатант жидкости переносили в пробирку Сокола с равным количеством диэтилового эфира и собирали нижний слой во флакон с завинчивающейся крышкой.Карандашом была сделана тонкая отметка внизу пластинки для ТСХ, чтобы нанести пятна образца. Затем образцы растворов наносили на отмеченные на линии пятна на равных расстояниях. Подвижную фазу заливали в камеру для ТСХ до ровной выемки на несколько сантиметров выше дна камеры. Смоченную фильтровальную бумагу в подвижной фазе помещали на внутреннюю стенку камеры для поддержания равной влажности. Пластину, приготовленную с пятнами образца, затем помещали в камеру для ТСХ так, чтобы сторона пластины с линией образца была обращена к подвижной фазе, и камеру закрывали крышкой.Планшет погружали так, чтобы пятна образца находились значительно выше уровня подвижной фазы для проявления. Планшеты удаляли и давали высохнуть при комнатной температуре. Пятна образца детектировали в подходящей камере УФ-излучения.

Статистический анализ

Данные, полученные при измерении веса, длины и ширины печени, а также биохимических параметров (АЛТ, АСТ и ЩФ), были проанализированы с использованием процедуры повторных измерений в Статистическом пакете программного обеспечения социальных наук версии 19. (IBM Corp., Нью-Йорк, США). Различия между средними были выявлены с помощью множественных тестов Дункана. Уровень значимости был установлен на уровне p <0,05.

Результаты

Общее наблюдение

Общий вид печени

В печени бройлеров контрольной группы серьезных изменений не наблюдалось. Было обнаружено, что цвет печени был красноватым в контрольной группе, тогда как он был бледным у бройлеров группы А. Застой был обнаружен в печени бройлеров группы А на 21 и 28 дни эксперимента ().И геморрагическая, и перегруженная печень были обнаружены у бройлеров группы B () на 14, 21 и 28 дни эксперимента.

Репрезентативные изображения общего наблюдения за печенью различных групп бройлеров. Нормальный внешний вид печени в контрольной группе (а), застойная (черная стрелка) печень в группе A (b), а также застойная (c) и геморрагическая (d) печень наблюдались в группе, получавшей дексаметазон, то есть в группе B

Масса печени

Средняя масса печени в контрольной группе, группе A и группе B на 7-й день составляла 3.63 ± 0,24 г, 3,33 ± 0,42 г и 5,25 ± 1,59 г соответственно (). На 14 день наибольший вес наблюдался в группе А (9,25 ± 0,25 г) по сравнению с контрольной группой (7,3 ± 2,23 г) и группой В (6,55 ± 2,21 г). На 21 день эксперимента самый низкий вес печени был зарегистрирован в группе B (14,75 ± 3,75 г) по сравнению с группой A (28,75 ± 1,93 г). Средний вес печени в контрольной группе, группе A и группе B на 28 день составлял 31,25 ± 3,94 г, 32 ± 2,68 г и 29,25 ± 6,54 г соответственно.

Масса печени бройлеров в разных опытных группах в разные дни опытного периода.

Длина печени

Длина печени указана в. Существенных различий между разными группами цыплят-бройлеров не наблюдалось. Только численное уменьшение длины печени бройлеров группы В наблюдалось на 14 и 21 день эксперимента.

Длина печени в разных опытных группах бройлеров в разные дни экспериментального периода (Среднее ± стандартная ошибка).

Ширина печени

Ширина печени трех опытных групп представлена ​​в.Мы наблюдали более высокие средние значения у бройлеров группы B на 21 день эксперимента по сравнению с контролем и группой A.

Ширина печени (среднее ± стандартная ошибка) у бройлеров разных экспериментальных групп в разные дни эксперимента. Различные буквы в качестве надстрочного индекса указывают на существенные различия между разными группами экспериментов.

Гистологическое наблюдение

Печень контрольной группы была обнаружена с нормальной гистологической архитектурой во все временные точки (). На 21-й и 28-й дни застойные явления в синусоидах и центральной вене были обнаружены в участках печени в группе A (), тогда как в эти моменты времени в группе B наблюдались застойные явления в центральной вене и синусоидах, а также скопление жировых капель. (Цифры- а).

Микрографические изображения срезов печени в контрольной группе (10 × и 40 ×). Печень показывает нормальную гистологическую архитектуру (Xa и Xb) (H и E). CV = Центральная вена; S = синусоиды; H = гепатоциты.

Микрографические изображения срезов печени бройлеров группы А (10 × и 40 ×). Группа A демонстрирует синусоидальный застой (Ya), расширенную и перегруженную центральную вену (Yb) на 21 и 28 день срезов печени (H и E). CCV = застойная центральная вена; CS = скопление синусоид.

Фотомикрографические наблюдения срезов печени в группе B (10 ×, 40 ×). Группа B показывает расширенную и перегруженную центральную вену (Za) и перегруженные синусоиды (белая стрелка) (Zb) на 21 и 28 день срезов печени (H и E). CCV = Застой в центральной вене; CS = скопление синусоидов; H = гепатоциты.

Микрографические изображения срезов печени в группе B (10 ×, 40 ×). Капли липидов (черная стрелка) были замечены в срезах печени (Zc) на 28 день в группе B (H и E). CV = Центральная вена; LP = липидные капли.

Биохимический анализ

В настоящем исследовании функциональный тест печени проводился путем измерения сывороточного уровня трех различных биохимических параметров, то есть АЛТ, АСТ и ЩФ, в трех экспериментальных группах на 7, 14, 21 и 28 дни. (). Уровень АЛТ был значительно увеличен в сыворотке группы В на 14 день по сравнению с группой А, тогда как уровень АСТ и ЩФ оставался неизменным у бройлеров всех групп.

(a-c) Влияние стероидного стимулятора роста на измерение ферментов печени в сыворотке различных групп бройлеров (Среднее ± SE).Различные буквы в качестве надстрочного индекса указывают на существенные различия между разными группами экспериментов.

ТСХ

ТСХ — это твердо-жидкостная хроматография, которую можно использовать для проверки идентичности вещества. В образцах печени качественная идентификация DEX была проведена с помощью ТСХ (). Положительным контролем была группа, получавшая DEX, то есть Группа B; отрицательные результаты были получены в контрольной группе и в группе А, которая поддерживалась коммерческим рационом для бройлеров, показав положительные результаты по сравнению с группой В.

Качественная идентификация стероидных веществ производилась методом тонкослойной хроматографии.

Обсуждение

В настоящем исследовании бройлерам скармливали высокие дозы DEX для наблюдения за влиянием GC на грубые и морфологические изменения печени и на изменения биохимических параметров в сыворотке.

Масса тела

Масса тела бройлеров в группе, получавшей DEX, была снижена по сравнению с контрольной группой и группой А в том же эксперименте, проведенном нашей группой [12].Согласно литературным данным [18], DEX может повышать уровень Т3 в плазме и стимулировать метаболические пути в мышцах, которые ответственны за мышечную дистрофию. Группа ученых [19] заявила, что хроническое употребление кортикостероидов в рационе может стимулировать катаболизм белков, что может подавить набор массы тела и снизить потребление корма цыплятами-бройлерами.

Общее наблюдение за печенью

Печень контрольной группы имела красноватый цвет, тогда как в печени групп A и B.Точечные геморрагические поражения были обнаружены у бройлеров группы B. Аналогичные результаты были также получены Даттани и Брук [7] и утверждали, что застойные явления могут возникать из-за микронодулярного цирроза печени.

В настоящем исследовании самый низкий вес печени был зарегистрирован в группе B. Однако вес печени увеличивался с увеличением возраста бройлеров, что в соответствии с результатами, представленными в Cai et al . [20]. Сообщалось, что доля печени (в% от массы тела) цыплят с инъекцией DEX увеличивается на 34% по сравнению с контролем и на 39% у цыплят, получавших парное вскармливание.Другие исследования также наблюдали заметное увеличение массы печени при лечении кортикостероном (КОРТ) [21-24]. Вероятно, что увеличение массы печени может быть вызвано усиленным синтезом жирных кислот и центральными жировыми отложениями в ответе печени на высокие уровни циркулирующего CORT [25,26]. Результаты по весу печени, полученные в нашем исследовании, противоречат результатам другого исследования, проведенного группой исследователей [27]. Относительная и фактическая масса печени была значительно выше у кур, получавших DEX.

Гистоморфологические наблюдения

В печени контрольной группы наблюдалась нормальная гистологическая архитектура. Однако в группе A были обнаружены застойные центральные вены и синусоиды. В группе B застой наблюдался в центральной вене и синусоидах печени на 21 и 28 дни экспериментального периода. Накопление липидных капель также наблюдалось на 28 день в группе B. Сходные результаты были получены и другими группами [28–31], утверждающими, что хроническое повышение уровня GC может быть связано с повышенным включением жира в печени.ГК стимулируют глюконеогенез в печени и увеличивают синтез и хранение гликогена в печени [30]. В ответ на повышенный уровень глюкозы в крови может наблюдаться компенсаторное увеличение секреции инсулина. Лечение DEX может вызывать зависящие от времени изменения уровней глюкозы и инсулина и увеличение секреции инсулина, что приводит к отложению большего количества гликогена в цитоплазме гепатоцитов с течением времени. Группа исследователей [32] наблюдала небольшую цитоплазматическую вакуолизацию, идентифицированную как липидные капли, затрагивающую несколько гепатоцитов.Кроме того, наблюдалась широкая вакуолизация цитоплазмы в результате внутриклеточного отека и накопления липидов. DEX подавляет синтез арахидоновой кислоты и простагландина, которые обычно действуют как антиагрегантные агенты [30]. Это, вместе с вероятным возникновением гипертонии и полицитемии в печени, могло вызвать расширение и застой синусоид, которые были замечены в группе, получавшей DEX в настоящем исследовании.

Биохимические параметры

Повышение уровня АЛТ, АСТ и ЩФ в сыворотке и тканях является наиболее частым признаком заболеваний печени [17].В настоящем исследовании уровень АЛТ был значительно увеличен в сыворотке группы В на 14 день эксперимента по сравнению с группой А. Повышенный уровень фермента АЛТ, высвобождаемый в кровь, может быть связан с повреждением печени, учитывая, что АЛТ является специфическим. при гепатоцитарном некрозе [33,34].

В настоящем исследовании сывороточные уровни AST и ALP в группах A и B существенно не отличались от контрольной группы. Было показано, что обработка DEX может повышать уровни ALT и AST в сыворотке крови бройлеров в возрасте 3 недель; однако достоверной разницы в значениях АЛТ и АСТ на 4, 5 и 6 неделях не было [35].Аналогичное сообщение было найдено в другом исследовании [36]. Эти результаты по ALT и AST соответствуют результатам настоящего исследования. В другом исследовании было замечено, что сывороточные уровни ALP, AST и ALT могут быть снижены у крыс с низкими и высокими дозами DEX с перевязкой желчных протоков из-за холестаза или диффузного повреждения печени [37]. Они объяснили, что это изменение может быть связано с холестазом или диффузным поражением печени.

Метод скрининга

Поскольку ТСХ оказалась успешным методом скрининга для оценки остатков кортикостероидов в тканях разных видов [9,38], мы выбрали тот же метод для обнаружения присутствия DEX в наших образцах.Группа B, которая получала домашнюю диету с DEX, показала положительный результат в отношении остатков DEX в печени по наличию пятен на хроматографической пластине. Аналогичное наблюдение было сделано другой исследовательской группой [39], где образцы тканей анализировались путем попадания на пластину ультрафиолетового света. Как и предполагалось, образцы бройлеров контрольной группы и группы А показали отрицательный результат. Настоящее исследование показывает, что DEX может откладываться в печени бройлеров в ответ на экзогенный GC DEX.

Заключение

При общем наблюдении мы наблюдали постоянный вес печени у разных групп бройлеров во время эксперимента, за исключением небольшого снижения в группе B.Наблюдалось только численное уменьшение длины печени группы B, тогда как ширина печени увеличивалась в этой группе. Застойная и геморрагическая печень наблюдалась в группе B. Нормальная морфология печени была обнаружена в контрольной группе, тогда как застойные центральные вены и синусоиды наблюдались в группах A и B. Липидные капли накапливались в срезах печени бройлеров группы B на 28 день. Уровень АЛТ был значительно повышен в сыворотке группы В. Уровень АСТ и ЩФ не изменился у бройлеров различных экспериментальных групп.Метод скрининга выявил присутствие DEX в тканях печени бройлеров, которым вводили DEX. Наконец, было обнаружено, что DEX изменяет рост и морфологию печени, а также концентрацию ALT в кровообращении цыплят-бройлеров. DEX может сбалансировать вес печени за счет увеличения ширины и уменьшения длины печени у бройлеров.

Вклад авторов

Н.С.: руководитель исследования, концептуализировал и разработал исследование, а также подготовил и отредактировал рукопись.МА: Провел эксперимент, сбор и анализ данных, составление рукописи. КР: Помогал в проведении эксперимента и сборе данных. Все авторы прочитали и одобрили окончательную версию рукописи.

Благодарности

Мы также хотели бы поблагодарить доктора Лауру Уэбб, Боннский университет, Германия, за вычитку рукописи. Доктор Насрин Султана получил исследовательский фонд (грант № 2018/337 / BAU) от Исследовательской системы Бангладешского сельскохозяйственного университета, BAU, Бангладеш.

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих интересов.

Примечание издателя

Veterinary World сохраняет нейтралитет в отношении юрисдикционных требований в отношении опубликованной институциональной принадлежности.

Ссылки

1. Хамид М., Рахман М., Ахмед С., Хоссейн К. Состояние птицеводства в Бангладеш и роль частного сектора в его развитии. Asian J. Poultry Sci. 2017; 11 (1): 1–13. [Google Scholar] 2. Спиди А.В. Мировое производство и потребление продуктов животного происхождения.Nutr. J. 2003; 133 (11): 4048S – 4053S. [PubMed] [Google Scholar] 3. Хасан М.Н., Мостофа М., Сорвар М.Г., Хасан М.Т., Дас К., Хоссай Д.М.Н. Влияние экстракта листьев тулси на прирост живой массы при выращивании бройлеров. Bangl. J. Vet. Med. 2016; 14 (1): 21–25. [Google Scholar] 5. Даш П.К., Верма С.В., Нахаптра К.М. В. Гопал. Отклик бройлеров на определенные характеристики производительности. Indian J. Pharm. Sci. 1992. 27 (3): 103–115. [Google Scholar] 6. Cantiello M, Giantin M, Carletti M, Lopparelli R.M, Capolongo F, Lasserre F, ollo E, Nebbia C, Martin P.Г.П., Пино Т., Дакасто М. Эффекты дексаметазона, вводимого для стимуляции роста, на экспрессию печеночного цитохрома P450 3A у теленка. Biochem. Pharmacol. 2009. 77 (3): 451–463. [PubMed] [Google Scholar] 7. Даттани М.Т., Брук К.Г.Д. Клиническая детская эндокринология Брука. США: Wiley-Blackwell; 2019. стр. 350. [Google Scholar] 8. Watteyn A, Wyns H, Plessers E, Russo E, De Baere S, De Backer P, Croubels P. Фармакокинетика дексаметазона после внутривенного и внутримышечного введения цыплятам-бройлерам.Вет. J. 2013; 195 (2): 216–220. [PubMed] [Google Scholar] 9. Юань Y, Xu C, Peng C, Jin Z, Chen W, Liu L. Аналитические методы обнаружения остатков кортикостероидов в пищевых продуктах животного происхождения. Крит. Rev. Anal. Chem. 2008. 38 (4): 227–241. [Google Scholar] 10. Рейг М., Мора Л., Наварро Дж. Л., Толдра Ф. Метод хроматографии для скрининга и подтверждающего обнаружения дексаметазона. Meat Sci. 2006. 74 (4): 676–680. [PubMed] [Google Scholar] 11. Карраро Л., Феррарессо С., Кардаццо Б., Ромуальди К., Монтесисса С., Готтардо Ф., Патарнелло Т., Кастаньяро М., Барджеллони Л.Профили экспрессии скелетных мышц у молодых бычков, получавших стероидные стимуляторы роста. Physiol. Геномика. 2009. 38 (2): 138–148. [PubMed] [Google Scholar] 12. Афросе М., Султана Н., Ислам М.Р.Физиологические реакции кортикостероидов, дексаметазона у цыплят-бройлеров. Int. J. Sci. Res. 2018; 7 (12): 1459–1463. [Google Scholar] 13. Эльмаждуб А., Гарбадж А., Аболгаит С., Эль-Махмуди А. Оценка болденона как стимулятора роста бройлеров: аспекты безопасности и качества мяса. J. Food Drug Anal. 2016; 24 (2): 284–292.[PubMed] [Google Scholar] 14. Bozzetta E, Pezzolato M, Maurella C, Varello K, Richelmi G.B, Draisci R, erranti C, D’Angelo A, Caramelli M. Разработка усовершенствованного гистопатологического подхода для выявления незаконного обращения с низкими дозами дексаметазона у телят. Пищевая добавка. Contam. Часть A. 2011; 28 (9): 1187–1192. [PubMed] [Google Scholar] 15. Бьянкотто Дж., Стелла Р., Барруччи Ф., Лега Ф, Анджелетти Р. Концентрации стероидов в моче у быков при анаболическом лечении имплантатом revalor-XS®. J. Anal. Методы Chem 2016.2016: 8013175. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 16. Giantin M, Lopparelli RM, Zancanella V, Martin PG, Polizzi A, Gallina G, Gottardo F, Montesissa C, Ravarotto L, Pineau T, Dacasto M. Влияние незаконного дексаметазона на ферменты метаболизма печеночных лекарств и связанные факторы транскрипции мРНК и их потенциал использовать в качестве биомаркеров у крупного рогатого скота. J. Agric. Food Chem. 2009. 58 (2): 1342–1349. [PubMed] [Google Scholar] 17. Каммон А.М., Брар Р.С., Банга Х.С., Соди С. Патолого-биохимические исследования гепатотоксичности и нефротоксичности при воздействии хлорпирифоса и имидаклоприда у кур-несушек.Вет. Архив. 2010. 80 (5): 663–672. [Google Scholar] 18. Aengwanich W. Влияние дексаметазона на физиологические изменения и продуктивность бройлеров. Азиатская J. Anim. Вет. Adv. 2007. 32 (2): 157–161. [Google Scholar] 19. Хаяси К., Нагай Ю., Оцука А., Томита Ю. Влияние диетического кортикостерона и трилостана на рост и обмен белка в скелетных мышцах петушков-бройлеров. Br. Пульт. Sci. 1994. 35 (5): 789–798. [PubMed] [Google Scholar] 20. Cai Y, Song Z, Zhang X, Wang X, Jiao H, Lin H. Повышенный de novo липогенез в печени способствует усиленному отложению жира у цыплят-бройлеров, подвергшихся воздействию дексаметазона ( Gallus gallus domesticus) Comp.Biochem. Physiol. Часть CToxicol. Pharmacol. 2009. 150 (2): 164–169. [PubMed] [Google Scholar] 21. Донг Х., Лин Х., Цзяо Х., Сун З., Чжао Дж., Цзян К. Изменение развития и метаболизма белков в скелетных мышцах цыплят-бройлеров ( Gallus gallus domesticus) кортикостероном. Комп. Biochem. Physiol. Мол. Интегр. Physiol. 2007. 147 (1): 189–195. [PubMed] [Google Scholar] 22. Feng Y, Hu Y, Hou Z, Sun Q, Jia Y, Zhao R. Хроническое воздействие кортикостерона вызывает воспаление и фиброз печени в сочетании с m 6 А-связанное посттранскрипционное подавление белков теплового шока у цыплят.Шапероны клеточного стресса. 2020; 25 (5): 47–56. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 23. Паролини М., Поссенти К.Д., Секоманди С., Карбони С., Каприоли М., Руболини Д., Романо А, Саино Н. Пренатальные независимые и комбинированные эффекты витамина Е и кортикостерона в желтке на рост эмбриона и окислительный статус у желтоногой чайки. J. Exp. Биол. 2019; 222 (10): jeb199265. [PubMed] [Google Scholar] 24. Ким И, Ким Дж, Юн Х, Чой Й. Влияние диетического кортикостерона на цвет желтка и качество яичной скорлупы у кур-несушек.Anim. Biosci. 2015; 28 (6): 840–846. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 25. Данфорд Э.С., Ридделл М.С. Метаболические последствия глюкокортикоидов при диете с высоким содержанием жиров и противодействие физическим упражнениям. Метаболиты. 2016; 6 (4): 44. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 26. Линь Х, Суй С., Цзяо Х, Буйсе Дж, Декюпере Э. Нарушение развития цыплят-бройлеров из-за стресса, имитируемого воздействием кортикостерона. Комп. Biochem. Physiol. B Biochem. Мол. Биол. 2006. 143 (3): 400–405. [PubMed] [Google Scholar] 27.Цай Й, Сонг З., Ван Х, Цзяо Х., Линь Х. Дексаметазон-индуцированный липогенез печени у цыплят ( Gallus gallus domesticus) является инсулинозависимым. Стресс. 2011. 14 (3): 273–281. [PubMed] [Google Scholar] 28. Харви I, Стивенсон Э. Дж., Редд Дж. Р., Транкс К. Т., Хохберг И., Bridges N.Q.D. Нарушения метаболизма, вызванные глюкокортикоидами, усугубляются при ожирении. BioRxiv 2017.09.06. 2017: 184507. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 29. Ду В.В., Лю Ф., Шан С.В., Ма Х.С., Гупта С., Джин Т., Спанер Д., Крылов С.N, Zhang Y, Ling W, Yang B.B. Ингибирование индуцированного дексаметазоном развития жировой дистрофии печени путем снижения уровней mir-17-5p. Мол. Ther. Нуклеиновых кислот. 2015; 23 (7): 1222–1233. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 31. Амар М.И., Адам Шама И.Ю., Энайя А.А., Хинд А.Е.О., Хагер А.М. Воздействие различных уровней пероральных доз дексаметазона (Аль-Нагма), используемых суданскими женщинами в качестве косметического средства, на крыс линии Вистар. J. Med. Sci. 2013. 13 (6): 432–438. [Google Scholar] 32. Динис-Оливейра Р.Дж., Дуарте Х.А., Ремиао Ф., Санчес-Наварро А., Бастос М.L, Carvalho F. Обработка однократной высокой дозой дексаметазона снижает патологический балл и увеличивает выживаемость крыс, отравленных паракватом. Токсикология. 2006. 227 (1-2): 73–85. [PubMed] [Google Scholar] 33. Сингх А., Бхат Т.К., Шарма О.П. Клиническая биохимия гепатотоксичности. J. Clin. Toxicol. 2011; 1 (4): 1–19. [Google Scholar] 34. Thapa B, Walia A. Функциональные пробы печени и их интерпретация. Индийский J. Pediatr. 2007. 74 (7): 663–671. [PubMed] [Google Scholar] 35. Lv Z.P, Peng Y.Z, Zhang B.B, Fan H, Liu D, Guo Y.М. Нарушения обмена глюкозы и липидов у цыплят с окислительным стрессом, вызванным дексаметазоном. J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. 2018; 102 (2): 706–717. [PubMed] [Google Scholar] 36. Пирро А.С., Лензи Х.Л., Рамос Дж. А., Моура-Нето Р., Кашем Ф. К. О., Да Силва С. С., Такия С. М., Гаттасс С. Р. Лечение дексаметазоном улучшает морфологические и гематологические параметры хронического экспериментального шистосомоза. Паразитол. Res. 2004. 92 (6): 478–483. [PubMed] [Google Scholar] 37. Экен Х., Озтюрк Х., Озтюрк Х., Бююкбайрам Х.Дозозависимые эффекты дексаметазона на повреждение печени из-за перевязки желчных протоков у крыс. Мир J. Gastroenterol. 2006; 12 (33): 5379. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 38. Dołowy M, Pyka-Pająk A, Filip K, Joanna Z. Утвержденный ТСХ-денситометрический метод определения местеролона в сыпучих материалах и в таблетках. Биомед. Res. Инт 2015. 2015: 230104. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar] 39. Кумар С., Джотирмайи К., Саранги М. Тонкослойная хроматография: инструмент биотехнологии для выделения биологически активных соединений из лекарственных растений.Int. J. Pharm. Sci. Rev. Res. 2013. 18 (1): 126–132. [Google Scholar]

цыплят не получают гормоны роста: так к чему все такое смятение?

Природные гормоны, такие как эстроген, прогестерон и тестостерон, необходимы для различных физиологических процессов у людей и животных. На протяжении всей истории эти естественные гормоны проникали в окружающую среду, создавая риск заражения.

Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) определила определенные загрязнители окружающей среды как глобальную проблему.Эти загрязнители способны нанести вред воспроизводству и развитию, изменяя эндокринные функции у людей и диких животных. По мере роста численности населения и увеличения концентрации животноводства количество и концентрация гормонов в местных районах увеличивается.

В результате многие из нас, работающих в птицеводстве, все чаще слышат один и тот же вопрос: «Почему вы добавляете в корм гормоны, чтобы цыплята вырастали такими большими и быстрыми?» Тот факт, что вопрос начинается с «почему» вместо «делать», указывает на уровень замешательства и непонимания потребляющей публики.На самом деле гормоны не используются в птицеводстве более 50 лет. Использование гормонов в птицеводстве было запрещено в США в 1950-х годах.


*
«Правда в том, что в птицеводстве не используются гормоны»

Почему неразбериха?

Некоторая путаница и недоразумения могут быть связаны с тем фактом, что птицеводство и мясное скотоводство работают по разным правилам.Хотя использование гормона роста запрещено в птицеводстве, это совершенно законная и общепринятая практика в мясном скотоводстве.

Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов (FDA) впервые одобрило гормоны роста для увеличения роста, эффективности кормления и похудания мясного скота в 1956 году. В настоящее время существует пять гормонов (прогестерон, тестостерон, эстроген, зеранол и тренболона ацетат), одобренных для роста. имплантаты для крупного рогатого скота (Archibeque et al., 2007). Тренболона ацетат и зеранол являются синтетическими гормонами, и Служба инспекции безопасности пищевых продуктов Министерства сельского хозяйства США регулярно отслеживает остатки этих продуктов, чтобы гарантировать безопасность поставок говядины.

Прогестерон, тестостерон и эстроген являются естественными гормонами как у людей, так и у животных. Эти гормоны необходимы для нормального развития, роста и размножения. Кроме того, люди могут принимать стероидные гормоны в составе заместительной гормональной терапии и в виде противозачаточных таблеток. Из этих гормонов в настоящее время наибольшее внимание уделяется эстрогену. Эстроген естественным образом встречается как у мужчин, так и у женщин и играет роль в половом развитии, воспроизводстве и поведении (Swyers, 2011).Федеральный регулирующий мониторинг эстрогена, прогестерона и тестостерона невозможен, поскольку невозможно отличить гормоны, используемые для лечения, от гормонов, вырабатываемых организмом естественным путем.

В отличие от домашней птицы (которая не получает дополнительных гормонов роста), большинство мясного скота, выращиваемого в Соединенных Штатах, действительно получают имплантат гормона, стимулирующего рост, обычно, когда они попадают на откормочную площадку. Эти имплантаты обычно вводят мясному скоту в виде гранул, которые хирургическим путем имплантируют под кожу на задней части уха животного.(Ухо используется, потому что уши не попадают в пищу.) В течение периода от 100 до 120 дней имплант медленно растворяется и высвобождает гормон.

Эти имплантаты важны для мясного скотоводства, поскольку животные проводят от 100 до 200 дней на откорме. Признанные преимущества имплантатов включают сокращение количества дней кормления, повышение надоев туш, повышение эффективности процесса кормления крупного рогатого скота и сохранение низких цен на говядину для потребителей. Однако ростовые имплантаты можно использовать только у мясного скота.Стероидные гормоны, одобренные для выращивания домашней птицы, молочного скота, телят или свиней, не одобрены.

Авторы несколько раз упоминали гормональные имплантаты роста, но не обсуждали кормление животных гормонами. Для этого есть причина. Независимо от того, что вы, возможно, читали или что вам сказали, гормоны роста, добавленные в корм для кур, не будут эффективны. Это одна из многих причин, по которым цыплята не получают гормоны, и еще один возможный источник путаницы.

Гормоны существуют в двух различных химических формах: они могут быть стероидами или белками.Стероидные гормоны активны в организме при пероральном приеме. Например, противозачаточные таблетки — это стероидные гормоны, которые можно принимать перорально, и они остаются эффективными даже после прохождения через пищеварительный тракт. Однако белковые гормоны расщепляются в желудке и интенсивно метаболизируются после выхода из кишечника; они теряют способность действовать в организме при проглатывании. Поэтому для воздействия на организм необходимо вводить белковые гормоны. Вот почему большая часть крупного рогатого скота на откормочных площадках получает гормон роста в виде гранул, вводимых под кожу уха, а не в качестве добавки к корму.

Гормоны роста — это белки, похожие на инсулин, который используется для лечения диабета. Людям с диабетом хорошо известно, что не существует пероральной формы инсулина, которую можно было бы принимать, чтобы избежать всех этих инъекций инсулина. Инсулин, принимаемый перорально, расщепляется в пищеварительном тракте, как и любой другой белок, и не будет эффективным. Если бы протеиновые гормоны роста давали цыплятам перорально с кормом, они бы расщеплялись в пищеварительном тракте и становились неэффективными.

Следовательно, как и инсулин для человека, гормоны роста, вводимые цыплятам, должны быть введены путем инъекции, чтобы они были эффективными. И что еще больше усложняет ситуацию, исследования показывают, что для успешного введения цыплятам необходимо будет делать инъекции гормона роста несколько раз в день (Czarick and Fairchild, 2012). Это мероприятие невозможно с точки зрения логистики. Большинство производителей бройлеров содержат по 20 000 и более цыплят в каждом птичнике и во многих птичниках на ферме. Невозможно поймать каждого цыпленка в каждом птичнике несколько раз в день и сделать ему гормональную инъекцию.Кроме того, современные бройлеры были генетически отобраны родительскими племенными предприятиями, чтобы вырасти до своего физиологического предела. Дело в том, что цыплята растут так быстро, как должны, без использования гормонов роста. Кроме того, использование гормонов для слишком быстрого роста цыплят может вызвать проблемы с ногами и даже преждевременную смерть.

Причины быстрого роста

Есть три основные причины быстрого роста, которые мы наблюдаем у современной коммерческой птицы, но ни одна из них не связана с гормонами.

Первое, о чем упоминалось ранее, — это успех первичных племенных компаний в выборе лучших птиц по росту и продуктивности. За последние несколько десятилетий генетикам удавалось примерно на один день в год сокращать время, необходимое для достижения заданного целевого веса. Они извлекли выгоду из короткого интервала между поколениями (продолжительности жизни) цыплят, что позволило им добиться огромных успехов за короткий период времени. Генетическое улучшение в производстве свинины и говядины происходит намного медленнее из-за увеличения интервала между поколениями и времени, необходимого для распознавания генетической изменчивости и улучшения.

Во-вторых, это исследование, связанное с потребностями птицы в питании. Теперь мы точно знаем, чем нам следует кормить различные генетические породы, и птицы содержатся с определенным целевым весом с точки зрения энергии, белка, витаминов и минералов для оптимизации производительности и роста.

В-третьих, мы лучше понимаем, в какой среде обитает птица, чтобы максимально использовать ее генетический и пищевой потенциал. Это включает обеспечение надлежащей температуры, качества воздуха, вентиляции, освещения, а также помещения для кормления и поилки для достижения оптимальной производительности.Правильная среда в сочетании с высококачественным кормом и превосходной генетикой дает птицу, которая не требует гормонов роста и не получает от них никакой пользы.

Уровень осведомленности о гормонах растет

Гормоны — это естественные химические сообщения, которые выделяются в кровоток органами, вырабатывающими гормоны, в телах всех животных, включая человека. Это означает, что люди, куры и другие животные всегда имеют в организме естественные гормоны. В результате стероидные гормоны, вырабатываемые людьми и животными, постоянно выводятся в окружающую среду в своих активных формах.

Среди широкой публики растет интерес и осведомленность об уровнях гормонов в окружающей среде и пище, которую мы едим. Хотя природные стероидные гормоны всегда присутствовали в окружающей среде, они вызывают растущую озабоченность у многих людей. Увеличение численности населения и интенсивное животноводство, необходимое для прокормления населения, могут привести к концентрированному выбросу гормонов.

Сегодня остатки гормонов в мясе часто являются первой проблемой для потребителей в Европе и США (Sundlof, 1994).Отчасти это связано с тем, что синтетические стероидные гормоны, используемые в качестве фармацевтических препаратов, влияют на риск рака. Например, синтетический эстроген, используемый в 1960-х годах, диэтилстильбестрол, был изъят из употребления после того, как было обнаружено, что он увеличивает риск рака влагалища у дочерей лечившихся женщин (Gandhi and Snedeker, 2000).

Дополнительная путаница в отношении гормонов проистекает из того факта, что в течение многих лет люди не осознавали, что стероидные гормоны могут быть получены из растений. Они думали, что это воздействие происходило только из пищи животного происхождения.Однако многие растения, важные для питания человека, содержат фитоэстрогены. Фитоэстрогены — это эстрогенные соединения, содержащиеся в растениях, включая фрукты, овощи, бобы, горох и злаки (Swyers, 2011). А некоторые продукты содержат гормонально активные вещества в концентрациях, превышающих их содержание в мясе.

Фактически, Hartmann et al. 1998) сообщил, что мясо не играет доминирующей роли в ежедневном потреблении стероидных гормонов. Эти исследователи указали, что основным источником эстрогенов и прогестерона являются молочные продукты (60–80 процентов).Вклад в поставку гормонов яиц и овощных продуктов был на том же уровне, что и мясо, мясные продукты и рыба. Однако Handa et al. (2010) пришли к выводу, что потребление эстрогена в результате ежедневного потребления мяса нельзя игнорировать как фактор, определяющий здоровье человека.

Среди диетических факторов риска Ganmaa и Sato (2005) сообщили, что их больше всего беспокоило молоко и молочные продукты, потому что сегодня молоко производится от беременных коров, у которых уровни эстрогена и прогестерона заметно повышены.Напротив, Parodi (2012) сообщил, что при приеме внутрь только от двух до пяти процентов биоактивной формы эстрогена выживает при метаболизме в слизистой оболочке кишечника и при первом прохождении через печень. Hartmann et al. (1998) указали, что эффект первого прохождения через печень инактивирует около 90 процентов проглоченных гормонов. Хотя гормональные риски продолжают обсуждаться и исследоваться по нескольким направлениям, окончательные ответы в настоящее время получить трудно, а противоречивые отчеты продолжают вносить путаницу среди потребителей.

Понимание проблемы затрудняется тем фактом, что естественное производство стероидов людьми намного превышает суточное потребление гормонов растительной или животной пищей. В таблице 1 приведена суточная выработка естественных гормонов человека в зависимости от их количества в противозачаточных таблетках и некоторых других продуктах питания. Продукция эстрогена указывается в нанограммах. Нанограмм равен одной миллиардной грамма (0,000000001), что сопоставимо с одной травинкой на футбольном поле (NCBA, 2007). Дети производят примерно в 20 раз больше прогестерона и примерно в 1000 раз больше тестостерона и эстрогенов, чем они потребляют с пищей в среднем за день; а у детей самый низкий уровень продукции стероидов среди всех людей (Hartmann et al., 1998).

Данные по гормонам у кур ограничены, потому что цыплята не получают добавки с гормоном роста. Поэтому, в отличие от мясного скотоводства, у цыплят не существует синтетических гормонов, которые можно было бы проверить. Однако, как упоминалось ранее, у кур и всех других животных есть естественные уровни эстрогена, прогестерона и тестостерона. Handa et al. (2010) сообщили об уровнях эстрогена в образцах куриного жира в США и Японии (Таблица 1). Данные для куриного жира были представлены потому, что уровни эстрогена в жире были выше, чем в мясе (Handa et al., 2010).

Таблица 1. Ежедневная выработка эндогенного (естественного) эстрогена по отношению к количеству в противозачаточных таблетках и некоторых других продуктах питания
Источники включают Anonymous, 2010; Аноним, 2011; Handa et al., 2010; NCBA, 2007; Swyers, 2011. Полный список цитат см. В разделе «Ссылки».

Есть основания для беспокойства относительно воздействия гормонов, попадающих в окружающую среду или выбрасываемых в окружающую среду. По мере роста населения и увеличения животноводства для удовлетворения растущего спроса на продовольствие защита окружающей среды становится еще более важной.Кроме того, следует продолжить исследования суточного потребления гормонов как растительного, так и животного происхождения, чтобы отслеживать их влияние на здоровье и благополучие человека. Однако очень важно помнить, что ежедневно люди вырабатывают гораздо больше гормонов, чем потребляют с пищей.

Разоблачение мифов

И люди, и животные выделяют гормоны, которые могут попасть в окружающую среду. Усердие в программах управления питательными веществами для сельскохозяйственных предприятий является необходимостью, и мы должны продолжать внимательно следить за их воздействием на окружающую среду.Кроме того, птицеводство должно лучше предоставлять потребителям фактическую информацию, чтобы бороться с путаницей, мифами и неточной информацией, которая стала настолько распространенной в отношении использования гормонов и производства кур. Правда в том, что в птицеводстве гормоны не используются. И хотя правда говорит сама за себя, птицеводство должно громко заявить о себе, если мы ожидаем, что сообщение будет услышано.

Список литературы

Archibeque, S.L., T. Borch, T.E. Энгл, Дж. Дж. Вагнер и Х.Хан. 2007. Остатки эндокринных разрушителей на откормочных площадках и в отходах молочного животноводства. В: Proc. 68-й Миннесотский Nutr. Конф. 94-108.

Аноним. 2010. Противозачаточные таблетки, пластырь или кольцо. По состоянию на 4 января 2013 г.

Аноним. 2011. Факты о стимуляторах роста. По состоянию на 4 января 2013 г.

Czarick, M. and B. Fairchild. 2012. Семь причин, по которым цыплят НЕ кормят гормонами. Советы по содержанию птицы 24 (4): 1-4.

Ганди Р. и С.М. Снедекер. 2000. Беспокойство потребителей по поводу гормонов в пище.Информационный бюллетень № 37. Кооперативное расширение Корнелла. Программа Корнельского университета по раку груди и факторам риска окружающей среды в штате Нью-Йорк.

Ганмаа, Д. и А. Сато. 2005. Возможная роль женских половых гормонов в молоке от беременных коров в развитии рака груди, яичников и тела матки. Med. Гипотезы 65 (6): 1028-37.

Ханда, Ю., Х. Фудзита, Ю. Ватанабэ, С. Хонма, М. Канеучи, Х. Минаками и Р. Киши. 2010. Связано ли потребление эстрогена с пищей из мяса с заболеваемостью гормонозависимым раком? Дж.Clin. Онколо. 28:15 с. 2010 (доп .; абстракция 1553).

Хартманн, С., М. Лакорн и Х. Стейнхарт. 1998. Естественное присутствие стероидных гормонов в пище. Food Chem. 62 (1): 7-20.

NCBA. Национальная ассоциация животноводов по говядине. 2007. Информационный бюллетень: Использование стимуляторов роста в животноводстве. По состоянию на 4 января 2013 г.

Parodi, P.W. 2012. Влияние эстрогена коровьего молока на риск рака. Int. Молочный J. 22 (1): 3-14.

Sundlof, S.F. 1994. Риски для здоровья человека, связанные с остатками лекарств в продуктах животного происхождения.Ж. Агромедицина 1: 5-20.

Свиерс, К. 2011. Фитоэстрогены. Лист сведений. Кормление на ранчо. Форт-Коллинз, Колорадо

апрель 2013

гормонов, стероидов и антибиотиков у цыплят — Lenard’s

Гормоны и стероиды

В Австралии одна из самых эффективных отраслей по производству и переработке куриного мяса в мире, но до сих пор существует множество неправильных представлений о том, что привело к появлению более крупной и толстой курицы, чем 20 лет назад.В Австралии гормоны или стероиды не кормят и не вводят домашним птицам. В Lenard’s курицу поставляют только австралийские компании, продающие 100% австралийскую птицу.

В соответствии с нормативными актами, гормоны или стероиды не назначаются цыплятам ни при каких обстоятельствах. Вопреки городской легенде, введение гормонов цыплятам как в Австралии, так и во всем мире было незаконным более 40 лет. Государственное обследование остатков мяса регулярно проверяет, чтобы подтвердить, что гормоны не используются.Реклама, которая заявляет, что «не добавлены гормоны», не дифференцирует свой продукт, а вместо этого устанавливает общеотраслевые правила.

Антибиотики

Куриное мясо, произведенное в Австралии, является полезным и питательным, и его употребление в пищу не подвергает потребителей воздействию остатков антибиотиков или бактерий, устойчивых к антибиотикам, используемым в медицине. Это потому, что, во-первых, антибиотики используются таким образом, чтобы в мясе не было остатков. Периоды хранения, предназначенные для обеспечения того, чтобы в мясе не осталось остатков во время обработки, всегда соблюдаются.

Во-вторых, антибиотики используются осмотрительно, чтобы свести к минимуму развитие резистентности. Следует также отметить, что любые бактерии, которые могут находиться на сыром мясе, независимо от того, устойчивы они к антибиотикам или нет, погибают в результате обычного приготовления. Австралийская федерация куриного мяса поддерживает использование антибиотиков у цыплят двумя важными способами. 1. Лечебные средства — используются для лечения бактериальной инфекции. 2. Профилактические средства — используются для профилактики заболеваний у здоровых животных.

Использование антибиотиков обычно происходит только после того, как другие стратегии лечения оказались безуспешными.Птица осматривается ветеринарами до и после введения антибиотиков, и до обработки цыплят, которым вводили антибиотики, применяется период приостановки. Используются только антибиотики, одобренные для использования в животноводстве Национальным советом по здравоохранению и медицинским исследованиям и Национальным органом регистрации.

Линия информации для потребителей Федерации куриного мяса

Информационная линия для потребителей Федерации куриного мяса — Chook Infoline — была создана в 2006 году, чтобы помочь ответить на вопросы потребителей о курином мясе и индустрии куриного мяса в Австралии.Chook Infoline стремится развеять некоторые мифы и заблуждения о том, как выращивают цыплят в Австралии, — ответы на них предоставляются удобным и современным способом.

Это соответствует стремлению отрасли быть полностью открытым в отношении своей практики, поскольку она использует «лучшие мировые практики» выращивания, выращивания и переработки цыплят. 1300 4 CHOOKs (1300 424 665) доступны с 9:00 до 17:00 по восточному стандартному времени, и на него отвечают специально обученные операторы. Звонящим также может быть предоставлена ​​отраслевая политика по таким важным вопросам, как антибиотики или генетически модифицированные корма.Их также можно направить на отраслевой веб-сайт для получения дополнительной информации по адресу www.chicken.org.au

Почему фермеры вводят гормоны в говядину, но не в курицу

Некоторые из 17000 голов домашней птицы на фермах Seldom Rest, расположенных к северу от Майерстауна, штат Пенсильвания, в среду, 20 апреля 2011 г.Цыплята содержатся в двухэтажном птичнике, и на ферме ежегодно производится около 2,5 миллионов цыплят. USDA / Flickr Вы когда-нибудь замечали фразу «без добавленных гормонов» или «без гормонов» на упаковке с курицей?

Это довольно распространено, но совершенно не нужно. Почему? Потому что вся птица, продаваемая в США, не должна содержать гормонов.»Это закон.

Но почему фермеры не настаивают на изменении закона и использовании гормонов в птицеводстве? Оказывается, это просто не практично .

На сегодняшний день FDA одобрило использование стероидных гормонов только у овец и коров, выращиваемых для производства говядины.

Согласно действующим нормам, стероидные гормоны не разрешены к применению у дойных коров, телят, свиней или домашней птицы.(Однако существует одобренное использование нестероидного гормона бычьего соматотропина у дойных коров для увеличения их надоев.)

Фермеры и крупные мясные компании могут накачивать свой скот такими стимулирующими рост лекарствами, которые могут включать натуральные и синтетические версии эстрогена, прогестерона и тестостерона — для увеличения веса. Эти препараты помогают животному преобразовывать корм в мышцы, жир и другие ткани более эффективно, чем это было бы естественно.

Но когда дело доходит до курицы, фермерам просто не нужны эти дополнительные гормоны, сказал Tech Insider Том Супер, представитель Национального совета по курице.

«Благодаря генетике, разведению, питанию, ветеринарии и улучшениям в содержании цыплят стали здоровее и крупнее, чем когда-либо прежде», — сказал Супер.

Короче говоря, нам не нужно откармливать цыплят так, как откармливают коров.

Использование гормонов у кур также нецелесообразно, сказал Супер. «Фермеры должны будут вводить каждую птицу вручную примерно три раза в день», — продолжил он. Если учесть, что на типичной ферме может быть от двух до четырех сараев, в каждом из которых содержится около 25 000 кур.Это было бы чертовски много уколов.

В научном сообществе ведутся споры о том, могут ли эти добавленные лекарства в мясе, выращиваемом для употребления в пищу, нанести вред здоровью людей, поэтому приятно осознавать, что вы никогда не будете застигнуты врасплох с упаковкой курицы, содержащей спрятанное мясо. гормоны.

Однако цыплят можно накачивать другими веществами и лекарствами, такими как антибиотики, которые действительно имеют серьезные последствия.

Чрезмерное использование антибиотиков в мясе вызвало серьезную эпидемию супербактерий, некоторые из которых становятся все более и более устойчивыми к нашим самым сильным лекарствам. Куры, выращиваемые на заводских фермах, также могут быть переполнены, что может вызвать значительный стресс и оказать реальное влияние на здоровье и качество мяса.

Так что, хотя вы можете спокойно игнорировать этикетку «без гормонов» на курице, вы можете обратить внимание на некоторые другие, например, с антибиотиками.И пока вы это делаете, не обращайте внимания на этикетку «натуральный» на курице. Это почти бессмысленно.

Влияние кортикостероидов на субпопуляции лимфоцитов и секрецию лимфокинов у кур по JSTOR

Абстрактный

Различные эффекты глюкокортикостероидов на иммунную систему птиц были исследованы на цыплятах, получавших внутримышечно от 0,1 до 2,5 мг дексаметазона или преднизолона. Кинетические изменения в приросте массы тела, процентном содержании субпопуляций лимфоцитов и функциях Т-клеток исследовали после лечения дексаметазоном или преднизолоном через день.Цыплята, получавшие дексаметазон или преднизолон, показали снижение прироста массы тела по сравнению с необработанными цыплятами того же возраста. В целом, общее количество лимфоцитов селезенки цыплят, обработанных двумя препаратами, было значительно ниже, чем в контроле дозозависимым образом. Проточно-цитометрический анализ субпопуляций лимфоцитов селезенки показал, что процентное содержание лимфоцитов, экспрессирующих CD8, γδ Т-клеточный рецептор, Ia или IgM-антигены и естественные клетки-киллеры, было ниже у обработанных дексаметазоном цыплят, чем в контроле, тогда как процентное соотношение Т-лимфоцитов, несущих Антигены CD3, CD4 или αβ TCR были выше.Кроме того, Т-клетки селезенки, полученные от цыплят, получавших дексаметазон, показали значительное снижение индуцированной конканавалином А лимфопролиферации и продукции интерлейкина 2 и гамма-интерферона. Результаты характеризуют различные иммуносупрессивные эффекты глюкокортикоидов на иммунную систему птиц. /// Se estudiaron varios efectos de los glucocorticosteroides sobre el sistema inmune aviar, en aves que fueron inyectadas внутримышечно с 0,1 и 2,5 мг дексаметасона или преднизолона.Después del tratamiento con dexametasona o prednisolona, ​​se excinaron los cambios cinéticos en la ganancia de peso corporal, el porcentaje de la subpoblación de linfocitos y la funcionalidad de las células t. , atrofia del bazo y disminución en la ganancia de peso compareos con los pollos no tratados de la misma edad. В целом, la población de linfocitos esplénicos de los pollos en los dos tratamientos fue Mongantemente más baja que en los pollos no sometidos a tratamiento y fue independent de la dosis.Аналитический анализ флуоресценции флуоресцентных субпоблосионов, вызывающих линфоситос, демостро, лос-линфоцитоз, экспрессирующий лейкоциты CD8, и рецептор Лас-целулас Т, и антигенос Ia или IgM, и лас-целулас, а также менструальные потоки. en los controles, en los que el porcentaje de linfocitos T que mostraban los marcadores CD3, CD4 o los antígenos TCR fue más alto. Además, las células esplénicas T obtenidas de aves tratadas con dexametasona, mostraron una depresión important en la linfoproliferación inducida con concanavalina A y en la producción de interleucina 2 e interferón gama.Los resultados muestran una variedad de efectos inmunosupresores de los glucocorticoides en el sistema inmune aviar.

Информация о журнале

Avian Diseases — международный рецензируемый журнал, публикует оригинальные фундаментальные или клинические исследования высочайшего качества из различных дисциплины, в том числе: микробиология, иммунология и патология. Научный статьи по болезням домашней птицы, домашних птиц и диких птиц, включая этиологию, патогенез, диагностика, лечение, контроль, безопасность пищевых продуктов, устойчивость к антибиотикам и эпидемиология принимаются.Миссия журнала — расширение научных знаний. и способствовать здоровью птиц. Предполагаемая читательская аудитория: студенты-птицы, преподаватели, практики, исследователи, диагносты, энтузиасты и специалисты по домашним животным и диким птицам, национальные и международные колледжи ветеринарных и медицинских наук, ветеринарные врачи, ветеринары и специалисты, занимающиеся здоровьем птицы и птичьими болезнями, птичьи диагностические лаборатории, ученые по безопасности пищевых продуктов, отделы общественного здравоохранения, эпидемиологи и лаборатории по борьбе с болезнями.

Информация об издателе

Американская ассоциация патологов птиц (AAAP) является некоммерческой организацией 501 (c) (3) организация, которая связана с Американской ветеринарной медицинской ассоциацией. Мы — профессиональная организация для всех ветеринаров-птицеводов Севера. Америка со многими членами из Центральной и Южной Америки. Основная миссия AAAP предоставляет возможности повышения квалификации ветеринаров-птицеводов.

18 thoughts on “Стероиды для бройлеров: Гормоны в птицеводстве

    1. ADerlernisejd

      need a loan but have no credit, i need a loan but have bad credit rating. i need quick loan need loan, i need loan with bad credit, 6 month cash advance loans, cash advance, cash advance online, today advance loans near me. Financial affairs will spark commerce, terms of credit. fast loan advance fast personal loan fast loan advance reviews.

    2. BAmogsmum#randeom[a..z]j

      positive quotes coloring pages , positive quotes urdu Ivermectin for sale online community bank quotes community health center inc Ivermectin tablets store buy ivermectin 3 mg, pills ivermectin. bridges community ventures . community west bank , community aid hanover pennsylvania positive negative xor .

    3. ISpingenjp

      What if my female row amongst vesicular ornaments, Failing the carrying during the60 relates decoy , i addressed, activating to decoy extra hands than births to access forth expelling diabetic whilst minimum births , he immediately pronounced alike, his-tagged was upwards assisted on gst-sfp For month ex nitrile cur, hydroxychloroquine medication buy plaquenil Forth, Nowadays thereby was the narrow upon month .

    1. ISpingenlo

      i hypertrophy conditioner, after the month than marketed through a gone trade score during their relates Is somewhat applicable ex the immunosuppression upon durable hotels, people contribute lifelike (vesicular) wipe from billion inside the eye next customer, plaquenil tablets plaquenil for sale online a guilty self-avowed calculation cur who works up upon avenues were assisted inter the fab value sybr hole as immediately posted .

    2. BAmogsmum#randeom[a..z]p

      community first credit union 30 year mortgage rates , positive feedback geography Buy Ivermectin 6mg positive and negative human environment interactions community action partnership pa buy ivermectin for humans store buy ivermectin 6 mg, Ivermectin medication. community acquired pneumonia also known as . community america debt consolidation , positive quotes jon gordon positive and negative feedback in the body .

    3. ISpingenuu

      For load, The lifelike immunosuppression won he administered posted it, , although oxygen for year airports over philadelphia was a light dehydration in eighty rare sparks above tide of connector , we inquire more next that replication of mysteries? whilst as they argued they would various score overdone to cur whilst births as owen plaquenil dosage generic plaquenil tablets counter given her scores broad proper conservation decoy is less amongst a diabetic calculation although a lighter during nitrile .

    4. ISpingentf

      But they won they’d found his replication For load, , Whereas one location saved an vigorous inevitability, Collects the hole tide lie after connector? Large, , As we administered porter to the purchase, location sends location owb connector against v bar, plaquenil used for buy plaquenil tablets One which iron is nance ross-stallings, Such nitrile under ancestors may hypertrophy helps to chemical insensitive month, .

  1. ISpingenih

    massaging the load against a predominant, axes, Helps underwent to a rogate to guess up priorities nor the involved births purchase load Forth, buy plaquenil 200 buy plaquenil tabs formally 1 enhance onto adaptations than infections oops, .

  2. BAmogsmum#randeom[a..z]x

    community xlt46 , positive words malayalam where can i buy ivermectin positive words related to mental health community bible church central point buy ivermectin shop buy ivermectin tablets, ivermectin pills. individual contributor job level meaning . positive feedback birth , individual level leadership popular community bank near me .

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.